Industriële fabricage
Industrieel internet der dingen | Industriële materialen | Onderhoud en reparatie van apparatuur | Industriële programmering |
home  MfgRobots >> Industriële fabricage >  >> Industrial materials >> Nanomaterialen

Dual Stimuli-Triggered Nanogels in reactie op temperatuur- en pH-veranderingen voor gecontroleerde medicijnafgifte

Abstract

Poly-N -isopropylacrylamide (PNIPAM) nanogels zijn gemodificeerd met verschillende acrylzuur (AAc) -gehalten voor een efficiënte controle van de lagere kritische oplossingstemperatuur (LCST). In deze studie vertoonden PNIPAM-co-AAc nanogels nanogels twee volumefase-overgangen in vergelijking met PNIPAM. De overgangstemperatuur van PNIPAM-nanogels werd verhoogd met AAc-inhoud. De gecontroleerde geneesmiddelafgifteprestaties van PNIPAM-co-AAc-nanogels geladen met β-lapachon werden toegeschreven aan de AAc-gehalteverhouding en werden efficiënt geactiveerd als reactie op temperatuur en pH. Bovendien werden een colorimetrische celproliferatietest en directe op fluorescentie gebaseerde live/dead-kleuring gebruikt om de overeenstemming over de afgifteprofielen van geneesmiddelen te bevestigen. Ten slotte vertoonde PNIPAM-co-AAc20 een relatief lage geneesmiddelafgifte in het bereik van zure tot neutrale pH bij lichaamstemperatuur, terwijl de geneesmiddelafgifte bij basische pH werd gemaximaliseerd. Daarom hebben we aangetoond dat de op PNIPAM gebaseerde nanogel met de temperatuur- en pH-responsieve eigenschappen een veelbelovende nanodrager zou kunnen zijn voor mogelijke darmspecifieke medicijnafgifte.

Inleiding

Op prikkels reagerende nanodragers zijn over het algemeen ontwikkeld als medicijnafgiftesystemen voor therapie, beeldvorming en diagnostiek [1, 2]. Onlangs zijn verschillende stimuli, waaronder pH, temperatuur, biomoleculen, redox, magnetisch veld en ultraviolet licht, gebruikt om langdurige of gecontroleerde medicijnafgifte te induceren via een interne of externe activering [3,4,5,6]. Van deze stimuli zijn pH en temperatuur de meest bekende modaliteiten in systemen voor afgifte en afgifte van geneesmiddelen. Poly-N -isopropylacrylamide (PNIPAM) is een representatief temperatuurgevoelig polymeer dat is gebruikt in medicijnreservoirs en afgiftesystemen. Dit thermogevoelige polymeer heeft het vermogen om zijn fasegedrag te veranderen, vertoont een gezwollen toestand vanwege waterstofbinding tussen water en amide-functionele groepen bij de lagere kritische oplossingstemperatuur (LCST) en vertoont omgekeerd krimp van het polymeernetwerk via hydrofobe interacties boven de LCST [7,8,9]. Bovendien kan LCST gewoonlijk worden gecontroleerd door de complexerende verhouding van acrylzuur (AAc) of acrylamide gekoppeld aan PNIPAM [10, 11]. Specifiek kan AAc twee faseovergangen maken wanneer LCST wordt verschoven naar hogere temperaturen [12, 13]. PNIPAM-co-AAc nanogels beginnen te krimpen boven de LCST als gevolg van hydrofobe interacties [14, 15]. Deprotonering van carboxylgroepen in AAc veroorzaakt echter een toename van de nanogeldiameter vanwege de interelektronische afstoting en de verhoogde osmotische druk [16,17,18].

Door PNIPAM gemedieerde medicijnafgiftesystemen zijn ontwikkeld voor verschillende toepassingen op biomedische gebieden. Temperatuur- of pH-gevoelige PNIPAM-nanogels zijn gebruikt om het proces van geneesmiddeladsorptie en -afgifte te optimaliseren vanwege de omkeerbare faseovergangseigenschap [19,20,21,22]. Er is met name gemeld dat pH-waarden in verschillende weefsels worden overwogen voor orale toediening, hoewel er subtielere veranderingen zijn binnen verschillende weefsels [23,24,25,26]. Tot op heden hebben de intelligente biomaterialen die een coöperatieve respons kunnen genereren onder meerdere stimuli, zoals pH en temperatuur, voordelen getoond ten opzichte van die systemen die gevoelig zijn voor een enkele stimulus [27,28,29]. De verandering in hydrofiliciteit die wordt veroorzaakt door de temperatuurgevoeligheid, die kan worden aangepast om spontaan op te treden bij de pH van de omgeving, kan ook een belangrijke rol spelen bij de pH-gevoeligheid, samen met het LCST-gedrag van de copolymeren en gels.

β-lapachone (β-LP), een natuurlijke verbinding, toonde de therapeutische activiteit bij kankerbehandeling [30]. In de biogeneeskunde zijn de gefunctionaliseerde dragers van β-LP ontworpen met als doel de toxische effecten ervan te minimaliseren. Er zijn verschillende dragers voor β-LP-afgifte ontwikkeld met behulp van goud, grafeenoxide en PNIPAM [31, 32]. Tot op heden is β-LP-geladen PNIPAM toegepast op chemotherapeutische regimes bij lever-, borst-, prostaat- en colonkanker [33,34,35,36]. Hoewel verschillende β-LP-dragers zijn bestudeerd, was de relatief complexe voorbereidingsprocedures ongecontroleerde of spontane β-LP-afgifte gedeeltelijk hun efficiëntie beperkt. Het ontwikkelen van efficiënte dragers van β-LP voor biomedische toepassingen blijft dus een belangrijke taak.

Hierin hebben we een bidirectioneel gecontroleerd afgiftesysteem ontwikkeld met behulp van de thermo- en pH-gevoelige eigenschappen van PNIPAM. Dit medicijnafgiftesysteem bestaat uit PNIPAM-nanogel gecopolymeriseerd met AAc-inhoud en vormt een PNIPAM-co-AAc-nanogel. We beschreven een schematische weergave van de zelfassemblagestrategie, het laden van geneesmiddelen en de afgifte van PNIPAM-co-AAc-nanogel (schema 1). β-LP, een modelgeneesmiddel, werd via hydrofobe interacties in PNIPAM-co-AAc-nanogels geladen. De afgifte van β-LP door de geladen PNIPAM-co-AAc nanogels zou effectief kunnen worden gecontroleerd door temperatuur en pH. PNIPAM-co-AAc nanogels vertoonden een effectieve anti-proliferatieve eigenschap in fibroblasten met een basische pH bij lichaamstemperatuur. β-LP geladen in nanogels bereikte een significante therapeutische werkzaamheid met een thermo- en pH-responsieve structuur, daarom zou PNIPAM-gemodificeerde nanogel een goede kandidaat kunnen zijn voor op stimuli reagerende medicijnafgifte en behandeling van tumoren.

Schematische illustratie van dubbel gecontroleerde geneesmiddelafgifte van PNIPAM-co-AAc-hydrogels via temperatuur en pH

Methoden

Materialen

NIPAM (97%, Sigma-Aldrich, St. Louis, MO, VS) werd onder vacuüm bij kamertemperatuur gedroogd. N ,N ′-methyleenbisacrylamide (MBA), AAc, gedestilleerd water, ethylalcohol (EtOH), kaliumpersulfaat (KPS) (98%, Dae Jung, KOREA), β-LP (Natural Products, Korea) en fosfaatgebufferde zoutoplossing (PBS ) waren allemaal van analytische kwaliteit en werden zonder verdere zuivering gebruikt.

Synthese van de PNIPAM-co-AAc Nanogel

PNIPAM-co-AAc nanogel werd gesynthetiseerd volgens eerdere rapporten [37]. In een driehalskolf van 500 ml werden 2,26 g NIPAM-monomeer, 0,154 g MBA als verknopingsmiddel en 0 g, 0,036 g, 0,077 g, 0,145 g AAc toegevoegd aan 200 ml gedestilleerd water en vervolgens opgelost door te roeren met een magnetische staaf gedurende 30 minuten bij 75 ° C, gevolgd door de synthese van respectievelijk PNIPAM, PNIPAM-co-AAc5, PNIPAM-co-AAc10 en PNIPAM-co-AAc20. Zuurstof werd uit het mengsel verwijderd door spoelen met stikstof. Om de reactie te starten, werd 37,5 mg KPS als initiator aan de oplossing toegevoegd en vervolgens geroerd. Om verdamping van de oplossing door de hoge temperatuur te voorkomen, werd een terugvloeikoeler gebruikt. De oplossing werd binnen 10 min na toevoeging van KPS troebel. Om niet-gereageerde monomeren te verwijderen, werd het gedurende 7 dagen gedialyseerd met een dialysebuis (12-14 kDa). Het voor dialyse gebruikte gedestilleerde water werd dagelijks ververst. De verkregen materialen werden ingevroren in vloeibare stikstof en gedurende 3  dagen gevriesdroogd om gedroogde PNIPAM-co-AAc nanogel te verkrijgen.

β-LP Laden in PNIPAM-co-AAc

Eén milligram van de gesynthetiseerde PNIPAM-co-AAc-nanogel werd opgelost in 1 ml ethanol en 0,1 mg β-LP werd toegevoegd aan het opgeloste PNIPAM-co-AAc. Het mengsel werd een nacht in het donker krachtig geroerd bij kamertemperatuur. Na roeren werd de niet-ingekapselde β-LP gedialyseerd met een dialysebuis (6-8 kDa). De gedialyseerde nanogel werd ingevroren in vloeibare stikstof en gedurende 3 dagen gevriesdroogd. Vervolgens werd 1 ml PNIPAM-co-AAc-ingekapselde β-LP in de dialysebuis geïnjecteerd (6-8 kDa). Om verlies van oplossing te voorkomen, werd het uiteinde van de buis afgedicht. Na toevoeging van 10 ml ethanol werden de voorbereide dialysebuizen ondergedompeld in PBS-oplossing.

Karakterisering van PNIPAM-co-AAc

De morfologie werd bepaald met transmissie-elektronenmicroscopie (TEM) en veldemissie scanning-elektronenmicroscopie (FE-SEM). Kort gezegd, nadat PNIPAM-co-AAc-nanogels voldoende waren gedispergeerd met behulp van sonicatie, werden de dispersies op 300 mesh koperen roosters gedruppeld (Electron Microscopy Science, PA, VS) en 's nachts verdampt. Vervolgens werden TEM-beelden verkregen bij een versnellende spanning van 200 kV (JEM2100F, JEOL Ltd., Japan). SEM-microfoto's werden gescand bij een elektronenversnellingsspanning van 15 kV (JSM-7100F, JEOL USA). De spectra werden verzameld van Fourier-transform infraroodspectrometer (FT-IR, Nicolet 6700, Japan). β-LP-lading en hoeveelheid die vrijkwam uit de nanogels werden berekend met een UV-Vis-spectrometer (UV-1800, Shimadzu, Japan). Om de LCST te bevestigen, werd de nanogel nauwkeurig gemeten met intervallen van 1 °C op veranderingen in de grootte en oppervlaktelading van de nanogels met behulp van dynamische lichtverstrooiing (DLS) (ELS-2000ZS, Otsuka Electronics, Japan).

Drugsafgifte-eigenschappen van PNIPAM-co-AAc

Om het afgiftegedrag van β-LP te bestuderen, werd 10 ml β-LP-geladen nanogels overgebracht in een dialysebuis (3,5 kDa), die vervolgens werd geroerd bij kamertemperatuur en 37 ° C in PBS. Op een gedefinieerde afgiftetijd (0-12 uur) werd 2 ml van het monster in elke mengseloplossing geanalyseerd met de UV-Vis-spectrometer. In de UV-Vis-spectrometer werd de basislijn ingesteld op 200-800 nm met PBS bij pH 2, 4, 7,4 en 8, en 2 ml van de vrijgekomen β-LP in PBS-oplossing werd aan de cuvet toegevoegd.

Drugvrijmakende activiteit door temperatuur- en pH-stimulansen

Het dubbele effect op de levensvatbaarheid van de cellen werd geëvalueerd met de 3-(4,5-dimethylthiazol-2-yl)-2,5-difenyltetrazoliumbromide (MTT)-test. NIH3T3-fibroblastcellen werden uitgezaaid in platen met 96 putjes (2 × 10 4 cellen/putje) en overnacht gekweekt bij 37 ° C. Het medium werd vervolgens vervangen door vers medium dat vrij a-LP, PNIPAM-co-AAc5 en PNIPAM-co-AAc20 met inbegrip van a-LP in verschillende concentraties bevat. Na incubatie gedurende 3 uur werd MTT-oplossing aan elk putje toegevoegd en gedurende 4 uur geïncubeerd. Vervolgens werd het kweekmedium verwijderd, gevolgd door behandeling met de solubilisatie-oplossing. De absorptiewaarden bij 595 nm werden gemeten met een microplaatlezer (EL800, Bio-Tek Instruments, Winooski, VT, VS). De live / dode fluorescentiebeelden werden vastgelegd door een fluorescentiemicroscoop (IX37, Olympus, Japan). NIH3T3-cellen (1,5 × 10 5 cellen / putje) werden gezaaid in μ-Slide 8-putjes (ibidi, München, Duitsland) en overnacht gekweekt. Na vervanging van het kweekmedium werden 20 μg / ml gratis β-lapachone, PNIPAM-co-AAc5 en PNIPAM-co-AAc20 inclusief β-LP gedispergeerd in het kweekmedium aan de putjes toegevoegd. Na incubatie gedurende 3 uur of 6 uur werden de cellen gewassen en werd de levensvatbaarheid van de cellen geëvalueerd door de LIVE/DEAD® levensvatbaarheid/cytotoxiciteitstest (Molecular Probes, Eugene, OR).

Resultaten en discussie

Bereiding van PNIPAM-co-AAc Nanogels

PNIPAM-co-AAc nanogels met drie verschillende gehalten aan AAc (5, 10 en 20%) werden gefabriceerd door middel van een radicale polymerisatiemethode. TEM en SEM werden gebruikt om de deeltjesgrootte, morfologie en monodispersiteit van de nanogels te bevestigen. Zoals getoond in Fig. 1a en b, vertoonde PNIPAM-co-AAc5 nanogel een relatief uniforme grootteverdeling met een gemiddelde deeltjesdiameter van ongeveer 250 nm. Bovendien werd de sol-gel-overgang van de op PNIPAM gebaseerde nanogels waargenomen naarmate de temperatuur toenam. Hoewel waterige oplossingen van PNIPAM-co-AAc5 als een sol-fase bij kamertemperatuur aanhielden, ging de nanogel bij verwarming over in de gelfase, waardoor de oplossing troebel werd boven de LCST (figuur 1c). De zeta-potentialen van de PNIPAM, PNIPAM-co-AAc5, PNIPAM-co-AAc10 en PNIPAM-co-AAc20 daalden tot -13,56 mV, -16,61 mV, -21,87 mV en -23,62 mV vanwege de toegenomen hoeveelheid oppervlak carboxylgroepen geleverd door de AAc-inhoud (figuur 1d). Het gaf ook aan dat de hydrodynamische diameter van PNIPAM-co-AAc het bereik van 217-442 nm vertoonde toen de inhoud van AAc toenam tot 30 ° C vanwege toenemende waterstofbinding met water en interelektronische afstoting. De diameters van de nanogel namen echter af bij 50 ° C vanwege hydrofobe interacties (figuur 1e). Deze resultaten suggereerden dat PNIPAM-co-AAc in grootte kan variëren, afhankelijk van de hoeveelheid AAc die is gekoppeld aan PNIPAM en temperatuur. De samenstelling van de nanogel werd verder gekarakteriseerd met FT-IR-spectroscopie, zoals weergegeven in Fig. 2. De 1100 cm −1 ~1200 cm −1 piek aangegeven C-N buigen. De spectra vertoonden ook de -CH2 uitrekkende trillingspiek bij 1300 cm −1 ~1400 cm −1 . De extra piek bij 1600 cm −1 ~1700 cm −1 werd toegeschreven aan C=O, dat toebehoort aan NIPAM. In het bijzonder trad uitrekking van carbonzuur (−COOH) op bij 1700 cm −1 ~1800 cm −1 behalve de PNIPAM-nanogel. Een brede piek van 3200 cm −1 ~3300 cm −1 toonde de absorptie van N-H strekken. Daarom hebben PNIPAM-nanogelderivaten die zijn samengesteld uit verschillende mengverhoudingen van PNIPAM en AAc, verschillende kenmerken vanwege de verschillende AAc-gehalten.

een TEM en b SEM-afbeelding van PNIPAM-co-AAc5 nanogels. c Fysiek uiterlijk van PNIPAM-co-AAc5 nanogels. Schaalbalken zijn 500 nm. d Zeta-potentialen en e gemiddelde diameters gemeten bij 30 °C en 50 °C door DLS voor PNIPAM met 0%, 5%, 10% en 20% AAc-gehalten bij pH 7,4

FT-IR-spectra van PNIPAM met 0%, 5%, 10% en 20% AAc-gehaltes

Temperatuurgevoelige kenmerken

Om het temperatuurgedrag te onderzoeken, werd de grootteverdeling van PNIPAM-co-AAc-nanogels beoordeeld door DLS. De verandering in de hydrodynamische diameter werd gemeten in het temperatuurbereik van 30 tot 50 ° C om de LCST te bepalen. PNIPAM met 5%, 10% en 20% AAc-inhoud had twee verschillende overgangsstappen (Fig. 3). PNIPAM-co-AAc-derivaten begonnen de eerste overgangsstap bij 30 °C en gingen vervolgens de tweede overgangsstap in rond 40 °C. Bovendien had de tweede overgangstemperatuur de neiging toe te nemen met toenemende AAc-gehalten van de PNIPAM. Daarom was de LCST van PNIPAM-co-AAc20 op een relatief hoge temperatuur van 45 ° C, terwijl die van PNIPAM 32 ° C was. Dit verschil in LCST-waarden zou kunnen worden veroorzaakt door de verhoogde negatieve lading van PNIPAM-co-AAc-derivaten. De LCST-temperaturen van PNIPAM-co-AAc5 en PNIPAM-co-AAc10 waren echter bijna identiek bij respectievelijk 37 ° C en 39 ° C. Daarom werd PNIPAM-co-AAc10 niet verder gebruikt om de prestatie van geneesmiddelafgifte te evalueren. De LCST-waarden die werden verkregen in PNIPAM-co-AAc-derivaten waren vergelijkbaar met eerdere studie [37]. Deze resultaten toonden aan dat PNIPAM-co-AAc-nanogels twee fase-overgangen hebben en dat de LCST van PNIPAM die AAc bevat verschoven naar de hogere temperatuur als gevolg van hydrofobe interacties van de grensvlak PNIPAM-ketens en interelektronische afstoting via de carboxylgroepen van AAc.

Temperatuurafhankelijkheid van de hydrodynamische diameters van a PNIPAM, b PNIPAM-co-AAc5, c PNIPAM-co-AAc10, en d PNIPAM-co-AAc20 nanogels bij pH 7,4

Dubbel gecontroleerde geneesmiddelafgifteprestaties

Om de geneesmiddelafgifteprofielen van PNIPAM, PNIPAM-co-AAc5 en PNIPAM-co-AAc20 te vergelijken, werd β-LP dat vrijkwam uit de PNIPAM-co-AAc-derivaten gemeten gedurende een periode van 6 uur bij kamertemperatuur (24 °C) en lichaamstemperatuur (37 ° C). Aanvankelijk hebben we de UV-Vis-absorptiespectra van de PNIPAM-co-AAc20 en de PNIPAM-co-AAc20 inclusief β-LP gemeten en een sterke absorptie waargenomen bij 257 nm, overeenkomend met β-LP (aanvullend bestand 1:figuur S1). De medicijnlaadcapaciteit van met PNIPAM-co-AAc20 geladen β-LP bleek ongeveer 60% te zijn met behulp van een standaard concentratie-absorptiekalibratiecurve van β-LP (aanvullend bestand 2:figuur S2) [38, 39]. Zoals getoond in Fig. 4, toonde het cumulatieve percentage geneesmiddel dat vrijkwam uit PNIPAM-co-AAc-derivaten aan dat de hoeveelheid β-LP die vrijkwam uit PNIPAM-co-AAc20 relatief lager was en dat de afgifte-efficiëntie significant verminderd was in vergelijking met PNIPAM en PNIPAM -co-AAc5 bij beide temperaturen. De verzadigde geneesmiddelafgiftepunten van de meeste PNIPAM-co-AAc-derivaten werden echter binnen 2 uur na de behandeling waargenomen. In het bijzonder werd de efficiëntie van de geneesmiddelafgifte van PNIPAM-nanogels sterk beïnvloed door de reactietemperatuur. PNIPAM-co-AAc-derivaten vertoonden een verbeterde efficiëntie van geneesmiddelafgifte bij lichaamstemperatuur in vergelijking met die bij kamertemperatuur. Dit resultaat werd ook ondersteund door de significant hogere cumulatieve geneesmiddelafgifte van alle PNIPAM-derivaten wanneer de reactietemperatuur hoger was dan 40 °C (aanvullend bestand 3:figuur S3).

Cumulatieve afgifte van β-LP uit PNIPAM, PNIPAM-co-AAc5 en PNIPAM-co-AAc20 nanogels bij temperaturen van a kamertemperatuur (24 °C) en b lichaamstemperatuur (37 °C) en pH 7,4

Zoals weergegeven in figuur 4 en tabel 1, kunnen PNIPAM-co-AAc-nanogels bij hoge temperatuur het medicijn gemakkelijk afgeven vanwege hun opmerkelijke krimp. Bovendien werd de hoogste efficiëntie van geneesmiddelafgifte bij lichaamstemperatuur waargenomen in PNIPAM en de op één na hoogste efficiëntie was PNIPAM-co-AAc5. Beide hebben een relatief laag AAc-gehalte, wat leidt tot een lagere LCST-temperatuur. We hebben vooral waargenomen dat β-LP in PNIPAM-co-AAc20 met een relatief lagere efficiëntie (61%) bij lichaamstemperatuur werd afgegeven, terwijl in de andere nanogels ongeveer 80% van de β-LP bij dezelfde temperatuur werd afgegeven. Deze resultaten gaven aan dat PNIPAM-co-AAc20 een minimale afgifte van het medicijn bij lichaamstemperatuur vertoonde terwijl het zoveel mogelijk inkapselde, vergeleken met PNIPAM en ander PNIPAM-co-AAc5. Bovendien waren deze resultaten ook consistent met temperatuurafhankelijke veranderingen in de groottemeting van PNIPAM-derivaten om LCST-waarden te bepalen.

Vervolgens evalueerden we of PNIPAM-co-AAc20 de afgifte van geneesmiddelen kon regelen via een andere factor waarop PNIPAM reageert, pH, met maximale insluiting van het geneesmiddel bij lichaamstemperatuur. PNIPAM-co-AAc20 vertoonde een cumulatieve maximale afgifte-efficiëntie van ongeveer 70%, die met ongeveer 10% toenam bij pH 8 in vergelijking met een zure of neutrale pH. Ondertussen werd er geen significant verschil waargenomen tussen pH 7,4 en zure pH (Fig. 5 en Tabel 2). Samengevat geven deze bevindingen aan dat het geneesmiddelafgifteprofiel van PNIPAM-co-AAc20 kan worden beïnvloed door het gehalte aan AAc te regelen, en deze nanogel met dubbele gecontroleerde geneesmiddelafgifte zou de geneesmiddelafgiftesnelheid effectief kunnen moduleren bij basale pH-waarden waarvan bekend is dat ze aanwezig in delen van de dunne darm [40].

Cumulatieve afgifte van β-LP uit PNIPAM-co-AAc20 nanogels bij verschillende pH-waarden

Evaluatie van eigenschappen die geneesmiddelen vrijgeven

In vitro anti-proliferatie werd geëvalueerd om een ​​belangrijk criterium uit te voeren van nanomaterialen die zijn ontworpen voor gecontroleerde afgifte en afgifte van geneesmiddelen. Zoals aangegeven in Fig. 6 vertoonde vrije β-LP een lagere levensvatbaarheid van de cellen dan PNIPAM-co-AAc nanogels geladen met β-LP voor equivalente concentraties van β-LP. Bovendien vertoonde PNIPAM-co-AAc20-nanogel een relatief hoge levensvatbaarheid van de cellen bij een concentratie van 20 μg/ml, omdat de β-LP-afgifte van PNIPAM-co-AAc20-nanogel relatief laag was in vergelijking met die van de PNIPAM-co-AAc5-nanogel bij 37 °C. Bovendien viel dit resultaat ook samen met de cumulatieve profielen van geneesmiddelafgifte. Vervolgens hebben we de levensvatbaarheid van de cellen beoordeeld met behulp van fluorescerend gekleurde levende en dode cellen (Fig. 7). De kleuringstest met levende/dode cellen toonde aan dat β-LP en PNIPAM-co-AAc5 nanogel inclusief β-LP vergelijkbaar waren in cellevensvatbaarheid, terwijl PNIPAM-co-AAc20 een significante toename in cellevensvatbaarheid liet zien met een dosis van 20 μg/ml na behandeling gedurende 3 uur. Er werd echter een verhoogde geneesmiddelafgifte van PNIPAM-co-AAc20 waargenomen na incubatie bij pH 8,0 gedurende 3 uur en een significante, synergetische antitumoractiviteit werd waargenomen bij dezelfde pH tijdens de 6 uur na de behandeling. Deze bevindingen impliceerden dat de temperatuur en pH dual responsive PNIPAM-co-AAc20 nanogel een potentiële toepassing heeft voor gecontroleerde medicijnbelading en afgifte in de terminale dunne darm.

Antiproliferatieve activiteit van PNIPAM-co-AAc-nanogels geladen met β-LP in verschillende concentraties in NIH3T3-fibroblastcellen gedurende 3 uur bij 37 °C

Fluorescerende beelden van cytotoxiciteit in NIH3T3-cellen met a onbehandeld, b alleen β-LP, c β-LP/PNIPAM-co-AAc5, en d Behandeling met β-LP/PNIPAM-co-AAc20 gedurende 3 uur bij pH 7,4 en behandeling met β-LP/PNIPAM-co-AAc20 gedurende 3 uur (e ) en 6 u (f ) bij pH 8,0. De levende en dode cellen worden gekleurd met calceïne AM (groen) en ethidiumhomodimeer (rood). Schaalbalken zijn 100 μm

Conclusies

We hebben β-LP-geladen PNIPAM-co-AAc-nanogels ontwikkeld waarvan de medicijnafgifte kan worden geactiveerd door temperatuur en pH. Deze nanogelderivaten zijn ontworpen en bereid door middel van radicale co-polymerisatie. De LCST werd verhoogd met een toenemend AAc-gehalte van de PNIPAM-co-AAc-nanogels vanwege interelektronische afstoting tussen de carboxylgroepen op de AAc-inhoud, wat resulteerde in de krimp van PNIPAM-nanogels en de daaruit voortvloeiende afgifte van geneesmiddelen. PNIPAM-co-AAc-nanogels met een hoog AAc-gehalte geladen met β-LP vertoonden een duidelijk verminderd in vitro afgifteprofiel bij lichaamstemperatuur. Bovendien kan de geneesmiddelafgifte worden bereikt met een opmerkelijk synergetisch effect bij een basische pH. Ten slotte demonstreren we dat PNIPAM-co-AAc20 optimale eigenschappen heeft, met een verminderde efficiëntie van de geneesmiddelafgifte bij lichaamstemperatuur maar een verbeterde geneesmiddelafgifte bij pH 8,0, wat wordt ondersteund door cellevensvatbaarheidstests met behulp van fibroblastcellen. Daarom zou deze temperatuur- en pH-gevoelige nanogel een veelbelovende toepassing kunnen stimuleren voor dubbel gecontroleerde medicijnafgifte bij de fysiologische pH van de dunne darm en een aantrekkelijke modaliteit voor darmgerichte medicijnafgifte via orale medicijntoediening.

Afkortingen

AAc:

Acrylzuur

DLS:

Dynamische lichtverstrooiing

FE-SEM:

Veldemissie scanning elektronenmicroscopie

FT-IR:

Fourier-transform infraroodspectrometer

KPS:

Kaliumpersulfaat

LCST:

Lagere kritische oplossingstemperatuur

MBA:

N ,N ′-methyleenbisacrylamide

PNIPAM:

Poly-N -isopropylacrylamide

TEM:

Transmissie-elektronenmicroscopie

β-LP:

β-lapachone


Nanomaterialen

  1. LoRa voor controle-verlichting, sloten en vraagrespons
  2. DIY:temperatuurbewaking en -regeling voor HomeBrew
  3. Temperatuurmeting voor laboratorium- en wetenschappelijke projecten
  4. Nanovezels en filamenten voor verbeterde medicijnafgifte
  5. 5-aminolevulinezuur-squaleen nanoassemblages voor tumorfotodetectie en therapie:in vitro studies
  6. Nieuwe dubbele mitochondriale en CD44-receptor richtende nanodeeltjes voor door Redox Stimuli geactiveerde afgifte
  7. Onderzoek naar fysisch-chemische kenmerken van een op nanoliposoom gebaseerd systeem voor dubbele toediening van geneesmiddelen
  8. Onderkoeling van water gecontroleerd door nanodeeltjes en ultrageluid
  9. Pullulan-gebaseerde nanodeeltjes-HSA-complexvorming en geneesmiddelafgifte beïnvloed door oppervlaktelading
  10. Bedrijven zetten zich schrap voor de grote technische veranderingen en uitdagingen van 2019
  11. Dubbele spindel voor stromingsprofielen en vrije vorming