Industriële fabricage
Industrieel internet der dingen | Industriële materialen | Onderhoud en reparatie van apparatuur | Industriële programmering |
home  MfgRobots >> Industriële fabricage >  >> Industrial materials >> Nanomaterialen

Complementatie van ELISA en een interdigitated elektrode-oppervlak in gouden nanodeeltjesfunctionalisatie voor effectieve detectie van menselijke bloedstollingsdefecten

Abstract

Het ontwikkelen van een verbeterde diagnose met behulp van biosensoren is belangrijk voor de behandeling van patiënten voordat ziektecomplicaties optreden. Verbetering van biosensoren zou de detectie van verschillende biomarkers voor ziekten met een lage overvloed mogelijk maken. Efficiënte immobilisatie van sondes/receptoren op het detectieoppervlak is een van de efficiënte manieren om de detectie te verbeteren. Hierin hebben we het pre-alkalische detectieoppervlak geïntroduceerd met amine-functionalisatie voor het vangen van gouden nanodeeltjes (BNP) geconjugeerd aan menselijke bloedstollingsfactor IX (FIX), en we hebben de uitstekende prestaties van de strategie aangetoond. We hebben gekozen voor de enzymgekoppelde immunosorbent-assay (ELISA) en de interdigitated electrode (IDE), die veel worden gebruikt, om onze methode te demonstreren. De optimale hoeveelheid voor silanisatie bleek 2,5% te zijn, en BNP's van 15 nm zijn ideaal en gekarakteriseerd. De limiet van FIX-detectie werd bereikt met ELISA bij 100 pM met de voorgemengde BNP's en FIX, wat een 60-voudige verbetering in gevoeligheid laat zien zonder biofouling, in vergelijking met de conventionele ELISA. Verder werd FIX gedetecteerd met hogere specificiteit in humaan serum bij een verdunning van 1:1280, wat equivalent is aan 120 pM FIX. Deze resultaten werden aangevuld met de analyse op IDE, waar verbeterde detectie bij 25 pM werd bereikt, en FIX werd gedetecteerd in menselijk serum bij een verdunning van 1:640. Deze geoptimaliseerde oppervlakken zijn nuttig voor het verbeteren van de detectie van verschillende ziekten op verschillende detectieoppervlakken.

Inleiding

Verbetering van alle aspecten in de voorhoede van de geneeskunde is noodzakelijk om een ​​gezond menselijk leven te behouden en de levensduur te verlengen. Diagnose van ziekten is een van de belangrijkste gebieden op medisch gebied, die verder moet worden verbeterd om ziekten en behandelingen gemakkelijker te kunnen identificeren. Aan de andere kant moeten epidemische ziekten zoals griep en dengue in de beginfase worden opgespoord om verspreiding te voorkomen [1,2,3]. Er zijn verschillende diagnostiek waarvan is aangetoond dat ze echt kunnen worden gedetecteerd via een breed scala aan biomarkers [4, 5]. Van de eerder gegenereerde diagnosesystemen wordt de enzymgekoppelde immunosorbenttest (ELISA) algemeen beschouwd als de "gouden standaard" om de belangrijkste virale en bacteriële ziekten en moleculaire soorten te identificeren [6, 7]. Met ELISA zijn verschillende strategieën ontwikkeld met aansprekende eigenschappen als gebruiksgemak, precisie en lagere detectielimiet. Daarnaast is het gelijktijdig opsporen van verschillende ziekten en het screenen op de belangrijkste ziekten in de praktijk gebruikelijk [8,9,10]. ELISA is een immunoassay die wordt gebruikt om het beoogde doelwit te detecteren met behulp van het juiste antilichaam op polystyreen (PS) 96-wells-platen. De gevoeligheid en selectiviteit van de doelwitmoleculen zijn sterk afhankelijk van verschillende factoren in ELISA, zoals de bindingsaffiniteit van het doelwit en antilichaam, de interactie van primaire en secundaire antilichamen en de efficiënte immobilisatie van het doelwit op het ELISA-oppervlak. Vooral immobilisatie van het doelwit op de PS-plaat speelt een cruciale rol bij het beperken van de detectie. Antilichaam of eiwit kan fysiek adsorberen op het oppervlak van PS door de interactie van hydrofobe groepen met het antilichaam [11]. Er zijn enkele mogelijkheden, bijvoorbeeld met een zwakke binding van het antilichaam (of eiwit) of de instabiliteit van antilichaam op de PS-plaat en de niet-uniforme verdeling van antilichaam (of eiwit) leidend tot defecten in de detectie. Het is bewezen dat een juiste oriëntatie van antilichaam op de geïmmobiliseerde plaat de detectie met meer dan 64 keer verbetert in vergelijking met de willekeurig geïmmobiliseerde moleculen [12, 13]. Het vinden van de geschikte procedure voor de efficiënte immobilisatie van eiwit of antilichaam op de PS-plaat met uniformiteit is dus een cruciale behoefte. Verschillende onderzoekers maken gebruik van de immobilisatie van eiwitten op PS ELISA-platen door chemische of fysische processen, zoals een fotochemische reactie ondersteund door polyvinylbenzyllactonoylamide en immobilisatie van eiwitten in aanwezigheid van detergent [14,15,16]. Dixit et al. [8] hebben de antilichamen op de met amine gemodificeerde PS-plaat geïmmobiliseerd om de detectielimiet te verbeteren, en ze hebben aangetoond dat het voormengsel van (3-aminopropyl)triethoxysilaan (APTES) en antilichaam vóór de immobilisatiestap de gevoeligheid 54 keer verbeterde in vergelijking met de conventionele ELISA en bereikte de detectielimiet van 10 pM [8, 17].

In het huidige werk hebben we een nieuwe methode voor eiwitimmobilisatie op PS ELISA-platen geïntroduceerd, bijgestaan ​​door gouden nanodeeltjes (BNP's). BNP's zijn een van de krachtigste instrumenten op het gebied van sensorontwikkeling. Ze bieden positieve eigenschappen, zoals gemakkelijke dispersie in water, biologische inertie en goede compatibiliteit met oppervlaktefunctionalisering, en ze kunnen worden aangepast aan uniforme nanogroottes [18,19,20,21,22,23]. Het is bewezen dat BNP-geconjugeerde antilichamen de detectielimiet met influenzavirus en FIX op de waveguide-mode sensor verbeterden [21,22,23]. BNP's worden gebruikt in allerlei soorten sensoren, waaronder sensor met golfgeleidermodus, oppervlakteplasmonresonantie en Raman-spectroscopie voor hoogwaardige detectie. Bovendien zijn BNP's ook gebruikt in colorimetrische testen, waarbij de conjugatie van aptamer of antilichaam op BNP-oppervlakken werd gevolgd om de analyt met het blote oog te detecteren. Onderzoekers richten zich ook op het gebruik van BNP's in ELISA-methoden om de detectie te verbeteren [24]. Eerder verbeterde BNP-geconjugeerde anti-muis-IgG-HRP de detectie van Pb(II) en bereikte de detectielimiet van 9 pg/mL [25]. Lakshmipriya et al. hebben ontdekt dat de conjugatie van primaire en secundaire antilichamen op het BNP de detectie van ESAT-6-eiwit verbeterde, dat betrokken is bij het veroorzaken van tuberculose [9, 26]. Hier gebruikten we BNP's om het eiwit op het PS ELISA-oppervlak te immobiliseren met de chemische modificatie bijgestaan ​​​​door APTES. Deze benadering omvat twee stappen:functionalisering van het PS-oppervlak met aminegroepen met behulp van APTES, gevolgd door de immobilisatie van BNP-geconjugeerd eiwit op de met amine gemodificeerde PS-plaat. De aminegroepen van de APTES kunnen binden aan COOH-groepen op het PS ELISA-oppervlak. Aan de andere kant kunnen BNP-geconjugeerde eiwitten die zijn gestabiliseerd met anionische citroenionen binden aan de kationische APTES door elektrostatische interactie [11, 27, 28]. De amino-terminale groepen in de APTES verdringen de citraatgroepen op de BNP's en fixeren zich chemisch op de PS-plaat [29]. De positief geladen aminegroepen in APTES trekken ook de negatief geladen BNP's aan. Bovendien verandert de APTES-behandeling het PS-substraat om het meer hydrofoob te maken [30].

Een chemisch gemodificeerde ELISA-plaat en BNP-conjugatie werden gebruikt om factor IX (FIX) uit de menselijke bloedstollingscascade te detecteren. FIX is een belangrijk eiwit in het bloedstollingssysteem en lagere concentraties FIX in de bloedbaan leiden tot stollingstekort. De verbeterde immobilisatie van FIX op de ELISA-plaat via BNP's maakt een mogelijke route mogelijk voor detectie van de lagere niveaus van FIX. De BNP-gemodificeerde ELISA-plaat vertoonde een drastische verbetering in FIX-detectie. Verder hebben we ook de detectie van FIX in humaan serum aangetoond, en de huidige strategie kan worden gebruikt met ELISA om andere biomarkers te detecteren. Om de bovenstaande studie aan te vullen met het ELISA-substraat, hebben we de bovenstaande strategie ook toegepast op een ander veelgebruikt interdigitated elektrode-oppervlak (IDE) in een elektrochemische diëlektrische sensor om pure FIX en FIX te detecteren in een menselijk verdund serummonster (Fig. 1a, b) .

een Schematische weergave van de BNP-ondersteunde ELISA. BNP werd voorgemengd met eiwit en geïmmobiliseerd op APTES-gemodificeerd ELISA-oppervlak. Antilichamen werden vervolgens toegevoegd. Ten slotte werd substraat voor HRP gebruikt om het doelwit te detecteren. b Schematische weergave van de BNP-ondersteunde IDE

Materialen en methoden

Reagentia en biomoleculen

(3-Aminopropyl)triethoxysilaan (APTES) en menselijk serum werden gekocht bij Sigma-Aldrich (VS). FIX-eiwit en anti-FIX-antilichaam waren afkomstig van Abcam (Maleisië). Anti-muis-IgG-geconjugeerde mierikswortelperoxidase (anti-muis immunoglobuline HRP) werd gekocht bij Thermo-Scientific (VS). De ELISA-plaat werd aangeschaft bij Becton Dickinson (Frankrijk). ELISA 5x coatingbuffer werd verkregen van BioLegend (VK). Runderserumalbumine (BSA) en HRP-substraat werden verkregen van Promega (VS). Gouden nanodeeltjes (BNP's) (10, 15 en 80 nm) werden verkregen van Nanocs (VS). De analytische ELISA-lezer was van Fisher Scientific (Maleisië).

Optimalisatie met silaanreagens en BNP's

Om de geschikte concentraties van APTES en BNP's te optimaliseren, hebben we het immobilisatieproces uitgevoerd met verschillende combinaties van APTES en BNP's op de ELISA-plaat. Aanvankelijk werd de ELISA-plaat gedurende 1 uur gehydroxyleerd met 1% KOH. Vervolgens werden 1,25, 2,5 en 5% APTES gedurende 5 uur op afzonderlijke putjes van de ELISA-plaat bij kamertemperatuur (RT) gekoppeld. Daarna werden de verdunde BNP's (in gedestilleerd water) met een concentratie van 25, 50 en 100% geïmmobiliseerd op de APTES-gemodificeerde oppervlakken. FIX, bij 200 nM, liet men vervolgens binden aan de BNP-oppervlakken. De resterende bindingsplaatsen werden vervolgens geblokkeerd met 2% BSA, vervolgens werd een 1:1000 verdunning van FIX-antilichaam geïntroduceerd, gevolgd door de toevoeging van een 1:1000 verdunning van anti-muis-IgG-HRP. Ten slotte werd het substraat toegevoegd om FIX-interactie te detecteren. De putjes werden tussen elke stap 5 keer gewassen met wasbuffer (PBS-buffer met 0,05% Tween 20, pH -7,4). Ten slotte werd de optische dichtheid (OD) gemeten met een ELISA-lezer bij 405 nm. In dit experiment werden BNP's van 15 nm gebruikt.

De noodzakelijke omvang van het BNP bepalen

Na het bepalen van de geschikte concentratie van APTES en BNP-verdunning onder de optimale omstandigheden, werden 10, 15 en 80 nm BNP's geprobeerd voor FIX-immobilisatie om de meest geschikte grootte te bepalen. Dezelfde experimentele omstandigheden werden gebruikt als hierboven vermeld. APTES met 2,5% en een BNP-verdunning van 50% werden gebruikt voor de FIX-immobilisatie.

Specifieke en selectieve detectie van FIX

We bevestigden ook de specifieke binding van eiwit en antilichaam op de ELISA-plaat. Daarvoor hebben we drie verschillende soorten controle-experimenten gebruikt. We hebben de volgende volgorde van biomoleculen op de ELISA-plaat geïmmobiliseerd om als controles en specifieke omstandigheden te dienen:controle 1 (Cl), FIX-BSA-anti-muis IgG-substraat; controle 2 (C2), FIX-BSA-FIX antilichaam-substraat; controle 3 (C3), BSA-FIX antilichaam-anti-muis IgG-substraat, specifiek (S), FIX-BSA-FIX antilichaam-anti-muis IgG-substraat.

Detectie van BNP-geconjugeerde FIX op ELISA-plaat versus conventionele ELISA

FIX werd gedetecteerd met behulp van de BNP-gemodificeerde ELISA-plaat met twee verschillende methoden, zoals APTES-GNP-FIX en APTES-BNP voorgemengde FIX, en deze methoden werden vergeleken met de conventionele ELISA. De volgende stappen vormen de procedures. Conventionele ELISA:(i) FIX-eiwit werd verdund in 1 x coatingbuffer met concentraties van 0 tot 200 nM, (ii) geblokkeerd met 2% BSA, (iii) 1:1000 verdunning van FIX-antilichaam werd toegevoegd, (iv) 1:1000 verdunning van anti-muis-IgG-HRP werd toegevoegd, (v) substraat voor HRP werd toegevoegd en gemeten bij 405 nm.

APTES-GNP-FIX (methode 1):(i) PS-plaat werd geactiveerd door 1% KOH, (ii) 2,5% APTES werd toegevoegd aan de ELISA-plaat bij kamertemperatuur gedurende 5 h, (iii) 25% van de ontvangen 15  nm BNP werd toegevoegd en een nacht bij 4 °C gehouden, (iv) FIX met concentraties van 0 tot 200 nM mocht onafhankelijk binden aan het BNP-oppervlak, (v) het resterende oppervlak werd geblokkeerd door 2% BSA, (vi) 1:1000 verdunning van FIX-antilichaam werd toegevoegd, (vii) 1:1000 verdunning van anti-muis-IgG-HRP werd toegevoegd, (vii) substraat voor HRP werd toegevoegd en gemeten bij 405 nm.

APTES-BNP voorgemengde FIX (methode 2):(i) PS-plaat werd geactiveerd met 1% KOH, (ii) 2,5% APTES werd toegevoegd bij kamertemperatuur gedurende 5 h, (iii) premix van 25% 15 nm BNP-oplossingen met verschillende concentraties van FIX (geïncubeerd bij kamertemperatuur gedurende 30 min; 0 tot 200  nM) werden geïmmobiliseerd op het APTES-gemodificeerde oppervlak, (iv) het resterende oppervlak werd geblokkeerd door 2% BSA, (v) 1:1000 verdunning van FIX-antilichaam werd toegevoegd, (vi) 1:1000 verdunning van anti-muis-IgG-HRP werd toegevoegd, (vii) substraat voor HRP werd toegevoegd en gemeten bij 405 nm.

Detectie van FIX in menselijk serum en na het toevoegen van FIX

Om FIX in menselijk serum te detecteren, hebben we het serum hier voorgemengd met BNP's in plaats van FIX. Serumverdunningen van 20 tot 1280 werden getitreerd en gemengd met BNP's om de detectie van FIX te evalueren. Andere experimentele omstandigheden en concentraties werden gebruikt, vergelijkbaar met de vorige experimenten.

Experimenteren met spikes werd uitgevoerd door verschillende concentraties FIX (0 tot 8 nM) toe te voegen aan de geoptimaliseerde verdunning van humaan serum en vooraf te mengen met BNP's vóór immobilisatie op de ELISA-plaat. Andere experimentele omstandigheden en concentraties werden gebruikt zoals in de vorige experimenten.

Interdigitated elektrode oppervlaktefabricage

Het fabricageproces van de interdigitated electrode (IDE)-oppervlakte omvat het reinigen van wafels, groei van de oxidelaag, negatieve fotoresist-spincoating, fotoresistpatronen, aluminiummetaalafzetting, fotoresistverwijdering en het in blokjes snijden van wafels. Het proces werd gestart op een gebufferde, met oxide-etsmiddel gereinigde wafel, gevolgd door de oxidatie op de siliciumwafels (310 nm) bij hoge temperatuur (1000 °C), waarna het etsproces werd uitgevoerd met aluminium. Negatieve fotoresist werd afgezet door spincoater met een spinsnelheid van 2000 rpm. De resist is ontwikkeld door RD-6 na blootstelling aan UV-licht (240 s). Vervolgens werd aluminium van 240 nm neergeslagen door een thermische verdamper (Edwards Auto 306) bij 3,0 E−5 Torr. De fotoresist werd gestript met aceton totdat een vaste IDE verscheen, en vervolgens in blokjes gesneden om een ​​enkele IDE te creëren. Ten slotte werd de zinkoxidelaag bovenop gelegd voor ultieme biomoleculaire immobilisatie [31]. Alvorens verder te gaan met de hechting van zinkoxide, werd het detectieoppervlak eerst gewassen met 1 M kaliumhydroxide (pH 9,0).

Detectie van FIX op een BNP-gemodificeerd oppervlak

Na de optimalisatie en bevestiging van de detectie-efficiëntie van FIX met BNP-gemodificeerd ELISA-substraat, werd dezelfde oppervlaktemodificatie uitgevoerd op het IDE-oppervlak als aanvulling op de bovenstaande detectie. Aanvankelijk werd het IDE-zinkoxide-oppervlak gemodificeerd met amine door 2,5% APTES toe te voegen, verdund in ethanol gedurende 3  uur bij kamertemperatuur. Daarna werd het oppervlak vijf keer gewassen met ethanol en werd de premix van BNP's (25%) en FIX toegevoegd. Vervolgens werden de resterende oppervlakken geblokkeerd door ethanolamine en werd het FIX-antilichaam vervolgens toegevoegd om FIX te detecteren. De gelijktijdige veranderingen in het huidige signaal werden opgemerkt. Om de detectielimiet te controleren, werden verschillende concentraties FIX onafhankelijk gemengd met BNP's, geïmmobiliseerd op het amine-gemodificeerde IDE-oppervlak en vervolgens gedetecteerd door het antilichaam; de detectielimiet werd bepaald door 3σ-berekening. De overvloed aan FIX in het verdunde menselijke serum gemengd met BNP's werd geïmmobiliseerd op het amine-gemodificeerde IDE-oppervlak en vervolgens gedetecteerd door zijn antilichaam. De fabricage van het bovenstaande oppervlak volgde zoals eerder vermeld [31].

Resultaten en discussie

Voorbehandeling op een PS ELISA-oppervlak

Effectieve immobilisatie van eiwit of antilichaam op het polystyreen (PS) ELISA-oppervlak verbetert blijkbaar de detectielimiet van de interactie tussen doelwit en sonde. Er zijn verschillende immobilisatiemethoden gebruikt voor het aanhechten van eiwitten of antilichamen op de ELISA-plaat. In dit werk hebben we een chemisch gemodificeerd ELISA-oppervlak geïntroduceerd met BNP's voor immobilisatie van eiwitten of antilichamen. We wilden een van de belangrijke stollingsfactoren gebruiken, zoals factor IX (FIX), waarvan algemeen bekend is dat deze belangrijk is [32,33,34,35,36]. Figuur 1 toont de schematische weergave van de eiwitimmobilisatie op het polystyreen ELISA-oppervlak. Eerst werd het ELISA-oppervlak geactiveerd met 1% KOH. Bij afwezigheid van KOH-voorbehandeling is het aantal te binden APTES-moleculen op het PS-oppervlak minimaal. Dit komt door het ontbreken van polaire en waterstofbinding accepterende groepen, die de initiële adsorptie van APTES op polymeren vergemakkelijken [11]. Na KOH-behandeling werd het oppervlak gemodificeerd met een amine door de juiste concentratie APTES om de BNP's te vangen.

Karakterisering van het BNP

Voordat we verder gingen, hebben we de zoals ontvangen BNP's (15 nm) gekarakteriseerd door optische, morfologische en grootteverdelingsmetingen. Figuur 2a toont de UV-Vis-spectrofotometrie-analyse van de BNP's, die blijkbaar de piekmaxima bij 550 nm vertoonden. Transmissie-elektronenmicroscoopwaarnemingen laten zien dat de grootte van de BNP's ~ -15 nm is en dat de vorm goed is (figuur 2b en inzet). Fourier-transformatie infraroodspectroscopie-analyse werd uitgevoerd vanaf het golfgetal van 500 tot 4000 cm −1 (Fig. 2c). Een schijnbare enkele piek op 1650 cm −1 werd opgemerkt voor het goud samen met een andere kleine piek, terwijl de aanwezigheid van pieken voor aminegroepen die de aanhechting van APTES vertegenwoordigen. Verdere ondersteuning werd geleverd door de volumeverdeling en zeta-potentiaalanalyses. Op basis van deze analyse geeft de volumeverdeling aan dat er een kleine variatie is in de grootteverdeling (figuur 2d) en dat het zeta-potentieel -6,9 was, wat de stabiliteit van de in dit onderzoek gebruikte BNP's weergeeft (figuur 2e). /P>

Karakterisering van gouden nanodeeltjes. Uitgevoerd met de optimale maat 15 nm. een UV-Vis-spectrofotometrie-analyse. Een prominente enkele piek werd gevonden bij 550 nm. b Transmissie elektronenmicroscoop observatie. Inzet van de afbeelding toont de vergrote afbeelding. Schaalbalk wordt weergegeven. c Fourier-transformatie infrarood spectroscopie analyse. Schijnbare piekposities voor goud en NH2 zijn aangegeven. d Volumeverdelingsanalyse van het BNP. De verkregen verdeling wordt getoond. e Zeta-potentiaalanalyse. De waarde bleek − 6,9

. te zijn

Voorbereiding en optimalisatie van amine-oppervlak om BNP's vast te leggen

De hoeveelheid APTES heeft een grote invloed op de immobilisatie van het BNP of antilichaam op het PS-oppervlak. Over het algemeen hebben zeer drukke APTES-moleculen een kans om vals-positieve resultaten te creëren. Aangezien APTES is gebruikt van 1 tot 2% om het antilichaam in verschillende sensoroppervlakken te immobiliseren, hebben we hier getitreerd van 1,25 tot 5% APTES, bereid in absolute ethanol. Vervolgens was ons doel om BNP's op de APTES-gemodificeerde oppervlakken te immobiliseren. Er is een mogelijkheid dat de hogere aantallen BNP's het crowding-effect opleveren, dus BNP's met 25, 50 of 100% van 15 nm werden getest op het APTES-gemodificeerde oppervlak om de geschikte verdunning te optimaliseren. Op deze gemodificeerde oppervlakken werd 250 nM van de FIX gedetecteerd met FIX-antilichaam. Zoals getoond in Fig. 2a en b, vertoont 1,25% APTES minder optische absorptie (OD) met alle verdunningen van BNP's (25, 50 en 100%), terwijl 2,5 en 5% APTES een hogere absorptie vertoonden met zowel 50 als 100% van BNP's. Tegelijkertijd werd de signaal-ruisverhouding verbeterd met toenemende APTES- en BNP-concentraties (Fig. 3a, b). De 5% APTES met 50 en 100% BNP's vertoonden niet-specifieke binding, en 50 en 100% BNP's met 2,5% APTES vertoonden vergelijkbare absorptie. Op basis van deze verkregen waarden kozen we 2,5% APTES en 25% verdunning van het BNP voor verdere experimenten.

Bepalen van de hoeveelheden APTES en BNP. Er werden drie verschillende concentraties (1,25, 2,5 en 5%) APTES gebruikt met drie verdunningen van het BNP (25, 50 en 100%). een Visuele detectie van FIX na toevoeging van het substraat. Controlestroken zonder FIX werden opgenomen. b Grafische weergave van het optimale APTES-niveau. 2,5% APTES en 25% BNP bleken optimaal te zijn

Bepaling van de potentiële BNP-omvang

Na APTES- en BNP-verdunningsoptimalisatie hebben we vervolgens de geschikte grootte van BNP's geëvalueerd. Omdat het oppervlak een cruciale rol speelt bij de immobilisatie van eiwitten, hebben we hier geprobeerd drie verschillende BNP's van verschillende groottes te immobiliseren, waaronder 10, 15 en 80 nm. BNP's van verschillende groottes hebben verschillende oppervlakten en verschillende ladingen om het eiwit aan te trekken, en het bindingsvermogen op het APTES-gemodificeerde oppervlak is ook anders. Zoals getoond in Fig. 4a, werd 250 nM FIX gedetecteerd met het ELISA-oppervlak gemodificeerd met 10, 15 en 80 nm BNP's. Het bleek dat BNP's van 15 en 80 nm bijna dezelfde absorptie van 0,4 (OD) vertonen voor de detectie van 250 nM FIX, maar BNP's ter grootte van 10 nm vertonen slechts 0,34 OD. Uit dit experiment hebben we bevestigd dat 15 of 80 nm BNP geschikt zijn voor verdere experimenten, en we gingen verder met 15 nm BNP.

een Het bepalen van de ideale omvang van het BNP. Bij 10, 15 en 80 nm lieten 15 en 80 nm vergelijkbare resultaten zien. Met FIX is met vijftien nanometer de detectielimiet bepaald. b Een controle-experiment voor de detectie van FIX. Drie verschillende controle-experimenten (C1 - zonder FIX-antilichaam; C2 - zonder anti-muis IgG; C3 - zonder FIX) werden uitgevoerd. In geen van de controle-experimenten werd een significant signaal gevonden. Cijfer-inzetstukken geven de visuele resultaten weer

Experimentele strategieën om non-fouling en hoge prestaties te bevestigen

Voordat we de FIX op het BNP-gemodificeerde ELISA-oppervlak detecteerden, hebben we drie verschillende soorten controle-experimenten uitgevoerd, zoals uitgelegd in de sectie "Materialen en methoden". Zoals getoond in Fig. 4b, konden we geen significante absorptie waarnemen in de putjes voor controle-experimenten 1, 2 en 3 (C1, C2 en C3). In het specifieke experiment (S) wordt het hogere absorptieniveau duidelijk geassocieerd met duidelijke kleurveranderingen. In het geval van C1 hebben we geen FIX-antilichaam toegevoegd, wat bevestigt dat FIX-antilichaam specifiek interageert met FIX (in S). Er werd geen waarneembaar signaal gevonden in de afwezigheid van anti-muis IgG in C2, wat verdere verankering geeft voor de juiste interactie van FIX en antilichaam gevolgd door anti-muis IgG. In C3 konden we bij afwezigheid van FIX de significante absorptie niet meten. Uit deze resultaten werd de juiste interactie van FIX met zijn antilichaam op het ELISA-oppervlak bevestigd zonder niet-specifieke binding.

BNP-ondersteunde ELISA versus conventionele ELISA:bepaling van gevoeligheid

Na het uitvoeren van de controle-experimenten, hebben we FIX gedetecteerd met BNP-gemodificeerde oppervlakken en de resultaten vergeleken met de conventionele ELISA-methode. We hebben drie verschillende experimenten uitgevoerd voor de detectie van FIX. Eerst werd het BNP geïmmobiliseerd op APTES-gemodificeerde oppervlakken en vervolgens werd FIX door elektrostatische interactie op het oppervlak van het BNP bevestigd. Door de elektrostatische interactie hebben de meeste eiwitten de mogelijkheid om aan het BNP-oppervlak te binden; op die manier konden we FIX op het ELISA PS-oppervlak immobiliseren. De eiwitimmobilisatie hangt ook af van de ladingen die voortkomen uit de aminozuren en het BNP. Gopinath et al. [37] hebben de sterke binding van FIX op het BNP-oppervlak bewezen, en ze hebben ook gevonden dat het stabiel is onder omstandigheden met veel zout. Bij de tweede methode werden BNP en eiwit eerst voorgemengd voordat ze werden geïmmobiliseerd op het geamineerde ELISA PS-oppervlak. Er werd verwacht dat meer eiwitten op deze manier kunnen binden, omdat er een grotere kans is dat eiwitmoleculen in de oplossingstoestand aan het BNP-oppervlak kunnen binden. De voorgemengde oplossing werd vervolgens geïmmobiliseerd op de APTES-gemodificeerde amine-oppervlakken. Deze methoden werden vergeleken met de conventionele ELISA-methode. Zoals getoond in Fig. 5a, toonde conventionele ELISA (methode 1), toen we de FIX-concentratie titreerden van 0 tot 200 nM, de detectielimiet van 6 nM. De APTES-GNP-FIX-methode (methode 2) geeft de detectielimiet van 200 pM weer, wat meer dan 30 keer hogere gevoeligheid is in vergelijking met de conventionele ELISA. Verbetering van de gevoeligheid wordt bereikt door de juiste oriëntatie van grote aantallen antigenen die op de ELISA PS-plaat zijn geïmmobiliseerd, en uiteindelijk zullen meer antilichamen een interactie aangaan. In dit onderzoek werden gouden nanodeeltjes gebruikt om meer antigenen te immobiliseren door middel van aminemodificatie van de ELISA-plaat. Bij de conventionele ELISA worden antigenen direct geïmmobiliseerd op de ELISA-plaat, wat leidt tot een kleiner aantal moleculen dat zich aan het oppervlak bindt en een verminderde gevoeligheid veroorzaakt ten opzichte van de huidige door gouden nanodeeltjes gemedieerde strategie. Bovendien geeft gelokaliseerde oppervlakteplasmonresonantie een verdere verbetering van de gevoeligheid, zoals blijkt uit de onderzoeken met BNP's. Toen we BNP's premixen met FIX, zoals verwacht, was de detectielimiet sterk verbeterd en werd het niveau van 100 pM bereikt, wat een 60 keer hogere gevoeligheid is dan conventionele ELISA. Zoals getoond in Fig. 5a, kon duidelijk worden gezien dat wanneer we BNP's gebruiken voor eiwitimmobilisatie, de maximale absorptie ~ -0,6 bereikte voor zowel voorgemengde als direct geïmmobiliseerde eiwitten op de BNP-oppervlakken, maar de absorptie gevonden met conventionele ELISA was ~ -0,4 met behulp van de vergelijkbare concentratie (200 nM) van FIX. Zelfs bij andere concentraties liet methode 3 een hoger verschil in absorptie zien in vergelijking met de conventionele ELISA, en dit was ook redelijk hoger dan de methode 2. Bij conventionele ELISA werd de zichtbare detectie gevonden vanaf 25 nM, en vanaf 3 nM in methode 2. Met methode 3 konden we de kleurverandering van 200 pM FIX zichtbaar zien vanwege een hogere absorptie (figuur 5a). De absorptie was verzadigd bij 25 nM in methode 3. Omdat we de kleurveranderingen van 200 pM FIX konden visualiseren, hebben we de detectielimiet geëvalueerd en getitreerd met behulp van de lagere concentraties FIX. Het was duidelijk dat de detectielimiet 100 pM bereikte toen we de BNP's en FIX voormengden (Fig. 5b).

een Vergelijking van de gevoeligheid van FIX in BNP-gemodificeerde ELISA met de conventionele ELISA. FIX werd getitreerd van 0,2 tot 200 nM. Conventionele ELISA vertoont de detectielimiet van 6 nM. Op de BNP-gemodificeerde ELISA werd het signaal waargenomen tot 200 pM. Inzet van de afbeelding geeft de visuele resultaten weer. b Detectielimiet van FIX op BNP-gemodificeerde ELISA-plaat. FIX werd getitreerd van 25 tot 100 pM. De detectielimiet bleek 100 pM te zijn. Cijfer-inzetstukken geven de visuele resultaten weer

Detectie van FIX in menselijk serum en verbetering door FIX toe te voegen

Omdat FIX een belangrijke rol bleek te spelen in de stollingscascade [38, 39], hebben we na controle van de detectielimiet ook FIX gedetecteerd in humaan serum. Voor deze analyse hebben we het menselijke serum getitreerd in het bereik tussen 1:1280 en 1:20 verdunningen. Het verdunde serum werd voorgemengd met BNP's en geïmmobiliseerd op het APTES-gemodificeerde ELISA-oppervlak, zoals hierboven vermeld. Het was duidelijk dat de FIX werd gedetecteerd uit 1:640 verdunning van serum, wat overeenkomt met 125 pM FIX (Fig. 6a). Het gezonde menselijke serum bevat gewoonlijk ongeveer 87 nM FIX, samen met andere belangrijke eiwitten zoals albumine en globuline. Met onze strategie bereikten we de specifieke detectielimiet van 125 pM in humaan serum, wat nuttig is voor het identificeren van een bloedstollingsdefect. Aan de andere kant, toen we FIX van 1 tot 8  nM toevoegden aan de 1:640 verdunning van menselijk serum, vertoonde het toenames in de absorptie die gelijktijdig toenam met FIX-concentraties (Fig. 6b).

een Detectie van FIX in menselijk serum. Menselijk serum werd verdund van 1:20 tot 1:1280. FIX werd gedetecteerd in humaan serum verdund 1:640 (de afbeelding binnenin geeft de schematische weergave aan). b Spiking van FIX (0,125 tot 8 nM) in 1:640 verdunning van humaan serum. Met verhogingen van de FIX-concentratie werd de absorptie verhoogd. Cijfer-inzetstukken geven de visuele resultaten weer

Detectie van BNP-FIX op IDE-oppervlak:complementatieanalyse

Omdat bleek dat BNP-geconjugeerde FIX de detectielimiet verbeterde, hebben we een vergelijkbare strategie toegepast met behulp van de elektrochemische sensor met IDE-oppervlak om deze bevindingen aan te vullen. We hebben de FIX getitreerd van 25 tot 200 pM (gemengd met BNP's), geïmmobiliseerd op het amine-gemodificeerde IDE-oppervlak en vervolgens gedetecteerd met FIX-antilichaam. Zoals getoond in Fig. 7a, met toename van de FIX-concentratie, werd het huidige niveau ook gelijktijdig verhoogd vanaf de basislijn. FIX-niveau was verzadigd vanaf 200 pM en de detectielimiet bleek 25 pM te zijn. Deze detectie is viervoudig verbeterd vergeleken met ELISA (100 pM). Bovendien werd FIX-detectie aangetoond in het verdunde menselijke serum (Fig. 7b). Voor dit experiment werd menselijk serum verdund van 1:80 tot 1:1280. Zoals weergegeven in de afbeelding, vertoont de verdunning van 1:1280 (rode curve) een duidelijk verschil met de basislijn (zwarte curve) met de 3σ-schatting, wat aangeeft dat de duidelijke detectie van FIX uit menselijk serum met de verdunning van 1:1280 overeenkomt met met de resultaten van ELISA (gedetecteerd op 1:640). Detectie van IDE met minder verdunning toont de toename in de gevoeligheid.

een Limit of detection of FIX-conjugated GNP on IDE sensing surface. FIX was titrated from 25 to 400 pM. The limit of detection was found to be 25 pM. b Detection of FIX in human serum on the IDE sensing surface. Human serum was diluted from 1:80 to 1:1280. FIX was detected in human serum diluted 1:1280

Conclusie

Efficient immobilization of protein or antibody on the PS ELISA surface is a crucial step to improve the limit of detection. Here, we introduced a new and easy protein immobilization strategy on the PS ELISA surface assisted by GNPs. Two different methods were used:one is the direct immobilization of FIX on the GNP-modified surface, and another one is premixing of FIX with GNPs before attachment. It was found with the former method that improvement of the limit detection is 30-fold higher compared with the conventional ELISA. The latter method showed a 60-fold improved limit of detection compared to the conventional ELISA. We also demonstrated the detection of FIX in 1:650 diluted human serum, which is equivalent to 125 pM. Obviously, these strategies proved that the higher binding of proteins on the ELISA surface was able to improve the sensitivity and to be useful for detecting a wide range of biomarkers on the ELISA surface.

Beschikbaarheid van gegevens en materialen

All of the data are fully available without restriction.

Afkortingen

APTES:

(3-Aminopropyl)triethoxysilane

BSA:

Bovine serum albumin

COOH:

Carboxyl

ELISA:

Enzyme-linked immunosorbent assay

Fc:

Fragment crystallizable

GNP:

Gold nanoparticle

HRP:

Horseradish peroxidase

IDE:

Interdigitated electrode

IgG:

Immunoglobulin

OD:

Optische dichtheid

PEG:

Polyethyleenglycol

PS:

Polystyreen

PVLA:

Polyvinyl benzyl lactonoylamide

TMB:

3,3′,5,5′-Tetramethylbenzidine


Nanomaterialen

  1. Demonstratie van een flexibele op grafeen gebaseerde biosensor voor gevoelige en snelle detectie van eierstokkankercellen
  2. Multifunctionele gouden nanodeeltjes voor verbeterde diagnostische en therapeutische toepassingen:een overzicht
  3. Gouden nanobiosensor gebaseerd op de gelokaliseerde oppervlakteplasmonresonantie kan menselijke brucellose diagnosticeren, wat een snelle en betaalbare methode introduceert
  4. Met resveratrol geladen albumine-nanodeeltjes met verlengde bloedcirculatie en verbeterde biocompatibiliteit voor zeer effectieve gerichte pancreastumortherapie
  5. Synthese van elektrisch geleidende silica nanovezel/gouden nanodeeltjescomposiet door laserpulsen en sputtertechniek
  6. Afstemming van oppervlaktechemie van polyetheretherketon door gouden coating en plasmabehandeling
  7. Gemodificeerd hypervertakte polyglycerol als dispergeermiddel voor groottecontrole en stabilisatie van gouden nanodeeltjes in koolwaterstoffen
  8. Een efficiënt en effectief ontwerp van InP-nanodraden voor maximale oogst van zonne-energie
  9. Met antilichaam geconjugeerde silica-gemodificeerde gouden nanostaafjes voor de diagnose en fotothermische therapie van Cryptococcus neoformans:een experiment in vitro
  10. Biomedische toepassingen voor gouden nanoclusters:recente ontwikkelingen en toekomstperspectieven
  11. Effect van oppervlakteverstrooiing van elektronen op verhoudingen van optische absorptie en verstrooiing tot uitsterven van gouden nanoshell