Industriële fabricage
Industrieel internet der dingen | Industriële materialen | Onderhoud en reparatie van apparatuur | Industriële programmering |
home  MfgRobots >> Industriële fabricage >  >> Industrial materials >> Nanomaterialen

Aptamer-gemodificeerde magnetische nanosensitizer voor in vivo MR-beeldvorming van HER2-expressie van kanker

Abstract

Het doel van deze studie was de ontwikkeling van een humane epidermale groeifactor receptor 2 (HER2)-targetable contrastmiddel voor magnetische resonantie beeldvorming (MRI) met een hoge magnetische gevoeligheid. Een anti-HER2 aptamer-gemodificeerde magnetische nanosensitizer (AptHER2 -MNS) werd bereid door conjugatie met 5'-thiol-gemodificeerde aptameren en gemaleïmidyleerde magnetische nanokristallen (MNC's). De fysisch-chemische kenmerken en het vermogen tot richten van AptHER2 -MNS werden bevestigd en de bindingsaffiniteit (K d ) op HER2-eiwit van AptHER2 -MNS was 0,57 ± 0,26 nM. In vivo MRI-contrastverbeteringsvermogen werd ook geverifieerd bij HER2+-kankercel (NIH3T6.7)-xenograft-muismodellen (n = 3) bij 3T klinisch MRI-instrument. Het controle-experiment werd uitgevoerd met behulp van niet-gelabelde MNC's. De resultaten gaven aan dat contrastverbetering tot 150% werd bereikt in het tumorgebied in de T2-gewogen MR-beelden na de injectie van de AptHER2 -MNS-agens bij muizen die de NIH3T6.7-cellen ontvingen.

Achtergrond

Humane epidermale groeifactorreceptor 2 (HER2), die behoort tot de epidermale groeifactorreceptor (EGFR)-familie, speelt een sleutelrol bij menselijke maligniteiten en komt tot overexpressie in ongeveer 30% van de menselijke borstkankers [1] en in vele andere kankertypes , waaronder maag-, blaas-, eierstok- en longcarcinomen [1,2,3,4]. Patiënten met borstkanker die HER2 tot overexpressie brengen hebben doorgaans aanzienlijk lagere overlevingspercentages dan patiënten met niet tot overexpressie brengende HER2 kankers [5]. Bovendien leidt de overexpressie van HER2 tot verhoogde borstkankermetastasen [6,7,8]. Om deze reden dient HER2 als een belangrijke biomarker bij de diagnose van kanker. In de klinische setting wordt HER2 gebruikt als een typische biologische marker, samen met de oestrogeenreceptor (ER) en progesteronreceptor (PR), om de borstkanker te diagnosticeren. Zo krijgen borstkankerpatiënten een definitieve diagnose na histologische verificatie van HER2-, ER- en PR-expressieniveaus. Histologische verificatie is echter invasief en wordt slechts bij een beperkt aantal laesies uitgevoerd. Om deze reden zijn er verschillende onderzoeken uitgevoerd om de diagnostische markers niet-invasief te visualiseren via radiologisch onderzoek vóór histologische verificatie op basis van computertomografie [9, 10], positronemissietomografie [11,12,13], single-photon emissie computertomografie [14,15,16], magnetische resonantie beeldvorming (MRI) [17,18,19,20] en multimodale beeldvormingstools [21,22,23].

IJzeroxide nanodeeltjes (IONP's) worden gebruikt in verschillende niet-invasieve radiologische onderzoeken voor de observatie van klinisch relevante biomarkers [24, 25]. IONP's zijn compatibel met moleculaire beeldvorming omdat ze een hogere magnetische gevoeligheid of biocompatibiliteit hebben dan andere op zware metalen gebaseerde MRI-contrastmiddelen zoals op gadolinium gebaseerde contrastmiddelen (GBCA's) of nikkel- of kobaltbevattende contrastmiddelen. In het bijzonder, hoewel gecommercialiseerde MRI-contrastmiddelen en GBCA's in verband worden gebracht met problemen die verband houden met in vivo toxiciteit als gevolg van de afgifte van Gd 3+ ionen, hebben de op IONP gebaseerde MRI-contrastmiddelen een hogere in vivo veiligheid dan GBCA's omdat ze kunnen worden afgebroken tot ijzer, geabsorbeerd of geëlimineerd [26, 27].

Om IONP's toe te passen voor moleculaire beeldvorming, zijn de targeting-eenheden uiterst belangrijk en kunnen chemicaliën, koolhydraten, eiwitten, antilichamen of aptameren zijn [25, 28, 29]. Van deze moleculen hebben aptameren een stabiele driedimensionale structuur van een enkelstrengs nucleïnezuur dat een hoge bindingsaffiniteit en specificiteit op specifieke moleculen heeft. De hoge bindingsaffiniteit van Aptamers wordt veroorzaakt door hun ontwikkelingstechniek en systematische evolutie van liganden door exponentiële verrijking (SELEX) [30]. SELEX gebruikt zeer grote bibliotheken van oligonucleotiden met willekeurige sequentie (~ 10 15 ) kan worden verschaft door chemische synthese en parallel worden gescreend om aptameren te vinden die een hoge bindingsaffiniteit op het doelmolecuul hebben. Als resultaat van SELEX konden aptameren worden ontwikkeld met een hoge bindingsaffiniteit van het picomolaire concentratieniveau in het algemeen, terwijl die van andere biomoleculen varieert van micromol tot subnanomol [31, 32]. In het geval van de recent ontwikkelde aptameren van de derde generatie hebben ze ook in vitro en in vivo stabiliteit dankzij hun verbeterde resistentie tegen DNase of RNase door gebruik te maken van gemodificeerde nucleïnezuren [33, 34]. Om deze redenen komen aptameren naar voren als de voorkeursgroepen in onderzoek naar moleculaire beeldvorming [35].

Het doel van deze studie was de ontwikkeling van een aptameer-gemodificeerd T2-contrastmiddel op basis van magnetische nanokristallen (MNC's) met een hoge specificiteit voor kankercellen die HER2 tot overexpressie brengen. Om dit doel te bereiken, werden MNC's, die een hoge magnetische gevoeligheid hebben, bereid met een thermische ontledingsmethode en een HER2-specifiek aptameer (K d = 0,42 nM) werd gebruikt. De gesynthetiseerde contrastmiddelen werden gekarakteriseerd door analyse van de morfologie, magnetisatie-eigenschap en magnetische relaxiviteit. Ook hebben we in vitro en in vivo targeting-assays tegen HER2-eiwitten uitgevoerd in een tumor xenograft diermodel geïmplanteerd met respectievelijk een HER2-expressie kankercellijn.

Methoden

Materialen

TWEEN® 80 (T80), 4-(dimethylamino)pyridine, N ,N ′-dicyclohexylcarbodiimide, triethylamine, watervrij dichloormethaan, ijzer(III)acetylacetonaat, 1,2-hexadecaandiol, dodecaanzuur, dodecylamine en benzylether werden gekocht bij Sigma-Aldrich (VS) en 3-maleimidopropionzuur (MPA) werd gekocht bij TCI Amerika (VS). Roswell Park Memorial Institute (RPMI-1640), Dulbecco's gemodificeerde Eagle's medium, foetaal runderserum en Gibco® antibioticum-antimycotische oplossing werden gekocht bij Life Technologies (VS). De NIH3T6.7 werd gekocht bij American Tissue Type Culture (VS). Met diethylpyrocarbonaat (DEPC) behandeld water werd gekocht bij Biosesang Inc. (Korea). Het gethioleerde anti-HER2-aptameer [AptHER2 sequentie:5'-6CC 6GG CA6 G66 CGA 6GG AGG CC6 66G A66 ACA GCC CAG A-3' (6:NapdU), 5'-SH modificatie, 40-mer] werd gekocht bij Aptamer Science Inc. (Korea).

Synthese van multinationals

De monodisperse magnetische ijzeroxide-nanodeeltjes werden gesynthetiseerd met behulp van de thermische ontledingsmethode van Sun [36]. Deze magnetische nanodeeltjes worden MNC's genoemd vanwege hun voorlopers van ijzer (III) acetylacetonaat en oliezuur. In het kort werd een mengsel van ijzer (III) acetylacetonaat (2 mmol), oliezuur (6 mmol), 1-octadeceen (6 mmol), 1,2-hexadecaandiol (10 mmol) en benzylether (20 ml) in een driehalskolf met ronde bodem en mechanisch geroerd. Om resterende zuurstofmoleculen en water te verwijderen, werd het mengsel 30 minuten voorverwarmd tot 100 ° C. Het voorverwarmde mengsel werd vervolgens gedurende 2 uur tot 200°C verwarmd en gedurende 30 minuten onder een stikstofstroom bij 300°C onder terugvloeikoeling gekookt. Nadat de reactanten waren afgekoeld tot kamertemperatuur door de warmtebron te verwijderen, werden de reactanten gezuiverd met overmaat ethylalcohol. Centrifugatie werd in drievoud uitgevoerd om het product te scheiden van eventueel niet-gedispergeerd residu. De Fe3 O4 nanodeeltjesproducten werden vervolgens opnieuw gedispergeerd in 5 ml hexaan. Het eindproduct werd gesynthetiseerd door de hierboven beschreven procedure te herhalen met 100 mg Fe3 O4 en zijn voorlopers. De MNC-morfologieën werden geëvalueerd met behulp van een transmissie-elektronenmicroscoop met hoge resolutie (HR-TEM, JEM-2100, JEOL Ltd., Japan). De verzadiging van magnetisatie werd geëvalueerd met behulp van een vibrerende monstermagnetometer (VSM, MODEL-7300, Lakeshore, VS) bij kamertemperatuur. De hoeveelheid MNC's in het product werd geanalyseerd door het gewicht te meten met behulp van een thermo-gravimetrische analysator (SDT-Q600, TA Instrument), en de MNC's werden gewassen tot het gehalte aan Fe3 O4 bereikt ongeveer 80%.

Synthese van Maleimidyl-TWEEN ® 80

Voor de bereiding van maleimidyl T80 (Tm80), 15,3 mmol MPA en 22,9 mmol N ,N ′-dicyclohexylcarbodiimide werd respectievelijk opgelost in 10 ml dichloormethaan en vervolgens gemengd. Het mengsel werd vervolgens toegevoegd aan 20 ml dichloormethaan dat 7,6 mmol T80 bevat, gevolgd door de toevoeging van 3,2 ml triethylamine aan het mengsel. Ten slotte werd 22,9 mmol 4-(dimethylamino)pyridine opgelost in 10 ml dichloormethaan en alle reagentia werden gemengd in een flesje van 70 ml. Het uiteindelijke mengsel werd 48 uur met een magneet geroerd. De kleur van het mengsel veranderde van abrikoos naar een rode wijnkleur. Na 48 uur reageren werd het gekristalliseerde ureum door filtratie verwijderd. Om het dichloormethaan te verwijderen, werd de reactie gefiltreerd door verdamping in een roterende verdamper (N-1100, EYELA, Japan). Het resulterende product werd gesuspendeerd in gedeïoniseerd water en de ongeconjugeerde reagentia werden verwijderd door dialyse (Spectra/Por®, 1 kDa MWCO, Spectrum Laboratory Inc., VS). Het eindproduct werd bereid door vriesdrogen. De gesynthetiseerde Tm80 werd bevestigd door vergelijking met MPA en T80 met behulp van een UV–vis-spectrometer (UV-1800, Shimadzu, Japan), Fourier-transform infrarood (FT-IR) spectrometer (PerkinElmer, spectrum twee) en 1 H-nucleaire magnetische resonantie (NMR) spectrometer (Bruker Biospin, Advance II, zie aanvullend bestand 1:figuur S1).

Voorbereiding van Maleimidyl MNC's

In water dispergeerbare maleimidyl MNC's (mWMNC's) werden bereid met behulp van de nano-emulsiemethode [37]. In het kort, 100 mg Tm80 werd volledig opgelost in 20 ml gedeïoniseerd water en 4 ml n-hexaan met 20 mg MNC's werd snel geïnjecteerd in het Tm80-opgeloste water met ultrasone trillingen (190 W) en roeren (1200 tpm). Het emulsieproces werd gedurende 10 minuten voortgezet met een ijsgekoeld bad. Het overblijvende organische oplosmiddel werd 12 uur bij kamertemperatuur afgedampt en de producten werden gezuiverd door dialyse (Spectra/Por®, 3,5 kDa MWCO, Spectrum Laboratory Inc., VS) om overmaat oppervlakteactieve stof gedurende 3 dagen te verwijderen. De mWMNC's werden vervolgens geconcentreerd met behulp van een centrifugaalfilter (NMWL 3000, Amicon® Ultra, Merk Milipore Ltd., Duitsland) tot 1,25 mgFe /mL in met DEPC behandeld water. De met T80 omhulde MNC's (WMNC's) werden ook met dezelfde methode voorbereid.

Voorbereiding van AptHER2 -MNS

Voorafgaand aan conjugatie tussen mWMNC's en anti-HER2-aptameren, werd de reductiestap van met thiol gemodificeerde aptameren uitgevoerd. In het kort werd 1 nmol aptameer opgelost in 0,3 ml gedeïoniseerd water en werden triethylamineacetaat en 1,4-dithiltretoloplossing toegevoegd, waarbij de eindconcentratie respectievelijk 50 en 25 mM was. Dit mengsel werd 1,5 uur bij kamertemperatuur geschud en gezuiverd en ontzout door ethanolprecipitatie. De AptHER2 . voorbereiden -MNS, HER2-specifieke MRI-sonde, molecuulgewicht van MNC's werd theoretisch berekend (zie aanvullend bestand 1:figuur S2) en de mengverhouding van mWMNC's en aptamer werd aangeduid als 1:7. Daarom 100 g (Fe) mWMNC's (als Fe3 O4 , 45 pmol) werd opgelost in PBS (1 ml) en 5 μg (0,35 nmol) aptameer werd toegevoegd. Het mengsel werd 5 minuten bij kamertemperatuur geroerd en 2 uur bij 4°C geïncubeerd. De verdeling van de hydrodynamische diameter van de AptHER2 -MNS werd vervolgens geanalyseerd met behulp van een dynamische laserverstrooiingsanalysator (ELS-Z, Otsuka Electronics, Japan). Om het vermogen van de AptHER2 . te bevestigen -MNS als MRI-contrastmiddel, T2-relaxiviteitsanalyse (R2) werd uitgevoerd met een 1,5 T klinisch MRI-instrument met een micro-47-oppervlaktespoel (Intera, Philips Medical System, Nederland) met behulp van verschillende geconcentreerde fantomen van AptHER2 -MNS. De R2 van de AptHER2 -MNS werd gemeten met behulp van de Carr-Purcell-Meiboom-Gill (CPMG)-reeks bij kamertemperatuur:TR = 10 s, 32 echo's met 12 ms even echo-ruimte, aantal acquisities = 1, puntresolutie = 156 μm × 156 μm, en sectiedikte = 0,6 mm. De R2 werd gedefinieerd als 1/T2 met s −1 eenheden.

AptHER2 -MNS bindingsaffiniteitstest

Voor de validatie van de HER2-specificiteit van AptHER2 -MNS, de nitrocellulose filterbindingsmethode werd gebruikt [38]. De naakte AptHER2 en AptHER2 -MNS werden gedefosforyleerd met behulp van alkalische fosfatase (New England Biolabs, MA, VS). Het 5'- of 3'-uiteinde van de aptameren werd gelabeld door T4-polynucleotidekinase en [ 32 P]-ATP (Amersham Pharmacia Biotech, NJ, VS) [39]. De bindingstesten werden uitgevoerd door de 32 . te incuberen P-gelabelde aptameren in een concentratie van 10 pM met het HER2-eiwit in concentraties variërend van 100 tot 10 pM in selectiebuffer (20 mM Tris·HCl, pH 7,5 bij 4 °C, 6 mM NaCl, 5 mM 2-mercapto-ethanol, 1 mM Na3 EDTA, 10% v /v glycerol) bij 37 ° C gedurende 30 minuten. De mix van de 32 P-gelabelde aptameren en het HER2-eiwit werden gefilterd door een G-50-kolom (GE Heathcare Life Science, VK) om vrije radio-isotopen te verwijderen. De gefilterde mengsels werden ontwikkeld op de herbruikbare film en fracties van de HER2-eiwitgebonden aptameren werden gekwantificeerd met behulp van een fosforimager (Fuji FLA-5100 Image Analyzer, Tokyo, Japan). Om het effect van de niet-specifieke achtergrondbinding van het radioactief gemerkte aptameer aan het nitrocellulosefilter te elimineren, werden de onbewerkte bindingsgegevens gecorrigeerd door het experiment uit te voeren met behulp van 32 Alleen P-gelabelde aptamers.

In vivo MRI

Alle dierproeven werden uitgevoerd onder goedkeuring van de Association for Assessment and Accreditation of Laboratory Animal Care International. De in vivo MRI-scans werden uitgevoerd met behulp van een syngeen muistumormodel, dat werd gegenereerd door de implantatie van NIH3T6.7-cellen (1.0 × 10 7 cellen) in de dijen van 5 weken oude vrouwelijke BALB/c naakte muizen. Na 2 weken werd de tumorgrootte beoordeeld met MRI. Toen de tumorgrootte ongeveer 500 mm bereikte 3 , 100 μg (5 mg/kg) AptHER2 -MNS werd in de staartader geïnjecteerd. In vivo MRI-experimenten werden uitgevoerd met behulp van een 3,0 T klinisch MRI-instrument en een 8-kanaals menselijke polsspoel. Voor T2-gewogen MRI bij 3,0 T werden de volgende parameters toegepast:TR/TE = 1054/70 ms, aantal acquisities = 2, puntresolutie = 400 × 319 mm, en plakdikte = 1 mm TSE-factor = 8. controle-experimenten werden uitgevoerd met behulp van WMNC's met dezelfde methode. Alle T2-signaalintensiteiten werden berekend door het gemiddelde te nemen van ongeveer vijf interessegebieden (ROI's) getekend op de T2-gewogen MRI-beelden van elk muismodel (n = 3), en R2 (of R2*) waarde, omgekeerde waarde van T2, werd gebruikt in de signaalintensiteitsanalyse. De veranderingen in de tijd van de relatieve signaalintensiteit werden genormaliseerd door de initiële signaalintensiteit (pre-injectie). De histogramanalyse werd ook uitgevoerd op de R2-signaalintensiteit van voxel in ROI.

Histologische analyse

Pruisische blauwe kleuring, kan worden gebruikt om Fe-ionen in tumorweefsels te detecteren, werd uitgevoerd om de AptHER2 te bevestigen -MNS-targeting van kanker die HER2 tot expressie brengt na het oogsten van tumorweefsel van elk tumormodel na de in vivo MRI. De geoogste tumorweefsels werden 24 uur gefixeerd in 10% formaline-oplossing en ingebed in paraffine na uitdroging in toenemende ethanolconcentraties en opheldering in Histo-Clear® (National Diagnotics, VS). Pruisische blauwe kleuring werd uitgevoerd door de weefselplakjes (dikte   = 5 μm) op glasplaatjes te monteren, gevolgd door deparaffinering en hydratatie met respectievelijk Histo-Clear® en geconcentreerde ethanol. Daarna werden de objectglaasjes gedurende 1 uur in de Pruisisch blauwe werkoplossing (10% kaliumferrocyanide en 20% zoutzuuroplossing = 1:1) geplaatst. De kernen werden gekleurd met behulp van Nuclear Fast Red-kleuring (Sigma Aldrich, VS). Nadat we de weefselmonsters drie keer gedurende 30 minuten hadden gewassen, voegden we 2-3 druppels van de montageoplossing op de objectglaasjes toe en bedekten de objectglaasjes vervolgens met dekglaasjes. De gekleurde weefselcoupes werden bekeken met behulp van een Olympus BX51 en Olyvia-software (Olympus, Japan).

Resultaten en discussie

AptHER2 -MNS is ontworpen als een op één molecuul gericht middel op basis van IONP's voor de moleculaire beeldvorming van tumoren die HER2 tot expressie brengen met behulp van MRI. Vandaar dat AptHER2 -MNS moest een hoge specificiteit hebben voor het doelmolecuul en een grote magnetische gevoeligheid hebben. Om een ​​hoge magnetische gevoeligheid te verkrijgen, gebruiken de MNC's, monodispers Fe3 O4 nanodeeltjes, werden gesynthetiseerd met behulp van de thermische ontledings- en zaadgroeimethode [36]. Experimentele procedure van voorbereiding en in vivo toepassing van AptHER2 -MNS werd beschreven in Fig. 1. Ten eerste werden de grootte en vorm van de MNC's bevestigd door HR-TEM (Fig. 2a, b). In Fig. 2c werd de gemiddelde grootte van MNC's gemeten door de willekeurige selectie van 130 MNC's uit het TEM-beeld, en een zeer smalle grootteverdeling (10,49 ±-1,74 nm) en bolvorm werden waargenomen. De superparamagnetische eigenschap van de MNC's werd ook geëvalueerd door VSM, wat een MNC-verzadigingsmagnetisatiewaarde opleverde van 98,8 emu/gFe (Fig. 2d). Het T2-contrastmiddel, dat momenteel beschikbaar was via intraveneuze injectie, was gebaseerd op superparamagnetische ijzeroxiden (SPIO) of ultrakleine superparamagnetische ijzeroxiden (USPIO) [40]. SPIO of USPIO hebben ook superparamagnetische eigenschappen, maar ze hebben een verzadigingsmagnetisatiewaarde van minder dan 70 emu/gFe [40,41,42,43]. De superparamagnetische eigenschap is noodzakelijk voor het gebruik van IONP's als intraveneus contrastmiddel, omdat het ervoor zorgt dat IONP's alleen een magnetische eigenschap hebben als ze zich in het magnetische veld bevinden, en het voorkomt dat IONP's aggregeren. Bovendien zou een hogere verzadigingsmagnetisatiewaarde van MNC's nuttig kunnen zijn om de injectiedosis te verlagen dan op SPIO of USPIO gebaseerde contrastmiddelen.

Schematische illustratie die de experimentele procedure toont voor de bereiding van met aptamer gemodificeerde magnetische nanosensitizer (AptHER2 -MNS) en hun beoordeling van in vivo beeldvorming

Het resultaat van morfologische en magnetische karakterisering van multinationals. een TEM-afbeelding. b Vergrote TEM-afbeelding. c Grootteverdeling meten van TEM-afbeelding (totaal aantal 100). d Magnetisatiegrafiek

Om MNC's te gebruiken voor in vivo experimenten, werden WMNC's en mWMNC's bereid door een nano-emulsiemethode met respectievelijk T80 of Tm80. De fysisch-chemische kenmerken van bereid Tm80 en zijn voorlopers, MPA en T80, werden bevestigd door absorptie, FT-IR, 1 H-NMR spectrale analyse (zie aanvullend bestand 1:figuur S1). Zoals eerder gepubliceerd [44], zijn mWMNC's bereid met de nano-emulsiemethode met Tm80 stabiel gedispergeerd in water. Bovendien kunnen de maleimidylgroepen van mWMNC's gemakkelijk worden geconjugeerd met een molecuul dat thiolgroepen met een neutrale pH heeft en deze conjugatie genereert geen nevenproducten. Bovendien werd met NapdU gemodificeerd aptameer gebruikt om de in vivo halfwaardetijd te verlengen, en de halfwaardetijd was 151 uur in humaan serum (zie aanvullend bestand 1:figuur S3). AptHER2 -MNS werd bereid door conjugatie tussen mWMNC's en AptHER2 -SH, en de hydrodynamische eigenschappen van AptHER2 -MNS werden geëvalueerd met behulp van dynamische laserverstrooiing en MR-relaxiviteitsanalyse (Fig. 3). De diameters van WMNC's en AptHER2 -MNS waren respectievelijk 28,8 ± 7.2 en 34,1 ± 8.2 nm (Fig. 3a). Omdat de AptHER2 bestond uit 40-meer oligonucleotiden en was ongeveer 5-10 nm lang, de aanwezigheid van AptHER2 kan het verschil in hydrodynamische diameter veroorzaken. De relaxiviteit van WMNC's en AptHER2 -MNS was 265,7 en 257,2 mM −1 Fe s −1 , respectievelijk (Fig. 3b), die werd geëvalueerd om hun magnetische gevoeligheid als MRI-contrastmiddel te bevestigen. In het geval van T2-contrastmiddelen op basis van SPIO of USPIO, die door de FDA zijn goedgekeurd, werden ze bijna gesynthetiseerd door de co-precipitatiemethode. Om deze reden was hun kristalliniteit afgenomen, wat een lage relaxiviteit veroorzaakte (minder dan 190 mM −1 Fe s −1 ) onder het magnetische veld [40]. Door MNC's in dit onderzoek te gebruiken, kan AptHER2 -MNS had 35 ~  500% verhoogde magnetische relaxiviteit dan SPIO- of USPIO-gebaseerde T2-contrastmiddelen.

De karakterisering van WMNC's en AptHER2 -MNS voor gebruik als in vivo MRI-contrastmiddel. een hydrodynamische diameter (n = 5, WMNC's 28,8 ± 7,2 nm, AptHER2 -MNS 34,1 ± 8,2 nm). b Relaxiviteitsanalysegrafiek (n = 3, WMNC's R 2 = 265,7 mM −1 s −1 , R 2 = 0.99 en AptHER2 -MNS R 2 = 257.2 mM −1 s −1 , R 2 = 0.99)

De bindingsaffiniteit van AptHER2 -MNS voor HER2-eiwit werd geëvalueerd met behulp van een filterbindingstest (Fig. 4a) en de resulterende K d waarden van AptHER2 -SH en AptHER2 -MNS werden gemeten als respectievelijk 26,88 ±-8,24 en 0,57 ± 0,26 nM (Fig. 4b, c). AptHER2 -OH heeft een zeer hoge specificiteit voor HER2-eiwitten met een K d waarde van 0,42 ± 0,05 nM, en deze bindingsaffiniteit is ongeveer 10 keer hoger dan 5 nM van Herceptin® [45]. De bindingsaffiniteit van het naakte AptHER2 kan worden veranderd door conjugatie met de chemicaliën, moleculen of nanodeeltjes. Daarom is de bindingsaffiniteit van AptHER2 voor HER2-eiwitten moeten worden geëvalueerd na conjugatie met mWMNC's. De bindingsaffiniteit van AptHER2 -SH voor HER2 werd verminderd door de aanwezigheid van een thiolgroep in plaats van door het naakte AptHER2 omdat de thiolgroep kan worden gebonden met andere thiolresten in eiwitten of andere met thiol gemodificeerde aptameren. De bindingsaffiniteit van AptHER2 -MNS werd gemeten als vergelijkbaar met die van AptHER2 , betekent dit resultaat dat er ook niet genoeg ongebonden AptHER2 . is -SH dat de interactie tussen aptameer en HER2-eiwit kan onderbreken, noch mWMNC's hebben geen of zeer weinig invloed op de bindingsaffiniteit van aptameren.

Bindingsaffiniteitsgegevens van anti-HER2-aptameer (AptHER2 -OH) gethioleerde anti-HER2-aptameer (AptHER2 -SH) en AptHER2 -MNS op HER2-eiwitten door de filterbindingstest te meten. een De schematische illustratie die het proces van filterbindingstest van aptameren toont. b De fractiegebonden aptameergrafiek tegen HER2-concentratie. c De K d waardegrafiek van AptHER2 -OH (0,42 ± 0,05 nM, R 2 = 0.99, p < 0.0001), AptHER2 -SH (26,88 ± 8,24 nM, R 2 = 0.98, p < 0.0001) en AptHER2 -MNS (0,57 ± 0,26 nM, R 2 = 0.91, p = 0,001) berekend vanaf b . Foutbalken werden weergegeven door positieve y -alleen as

In vivo MRI-experimenten werden uitgevoerd met behulp van de syngene muistumormodellen om het vermogen van AptHER2 te evalueren. -MNS om zich te richten op tumoren die HER2 tot overexpressie brengen. Met behulp van een tumormodel dat werd gegenereerd door de implantatie van NIH3T6.7-cellen in de dij, werd een MRI-experiment uitgevoerd vanaf de pre-injectie tot 120 min na de injectie van WMNC's of AptHER2 -MNS (Fig. 5, zie ook Extra bestand 1:Figuur S4). Het T2-contrastverbeteringseffect door op IONP gebaseerde contrastmiddelen wordt waargenomen als een donkerder beeld omdat ze een T2-verkortingseffect van rond protonen induceren. Daarom werden in de signaalintensiteitsanalyses T2- of T2*-waarden weergegeven door R2 of R2*. R2, een omgekeerde waarde van T2, wordt gebruikt om de signaalintensiteit te vergelijken met een positieve waarde. In het geval van WMNC's werd de hoogste R2-signaalintensiteit 30 minuten na injectie van WMNC's waargenomen, waarna deze geleidelijk afnam (Fig. 5a, b). 120 min na de injectie van WMNC's leek de T2-signaalintensiteit op de pre-injectietoestand. De veranderingssnelheid in de gemiddelde waarde van R2-signaalintensiteit was minder dan 10%; dus was het moeilijk te herkennen in de T2-gewogen MR met het blote oog. In de vorige studie werd aangetoond dat de met T80 omhulde ijzeroxide-nanodeeltjes zich ophoopten rond de tumorweefsels ondanks de afwezigheid van enige targeting-eenheden [46]. In dat onderzoek werd echter een contrastmiddeldosis van 1,4 mgFe per muis werd gebruikt in de T2-gewogen MRI, die 14 keer hoger was dan de dosis die in dit onderzoek werd gebruikt. Dit betekent dat WMNC's geen effectieve contrastverbeteringseffectiviteit in het experiment konden aantonen bij een dosis van 0,1 mgFe per muis (5 mgFe /kg). De verandering in de tijdreeks van de R2*-signaalintensiteit was ook minder dan 10% en er was geen statistische significantie. Daarentegen 120 min na injectie, AptHER2 -MNS veroorzaakte een 130% hogere signaalintensiteitsverbetering dan vóór de injectie van AptHER2 -MNS ondanks het gebruik van dezelfde injectiedosis als WMNC's (Fig. 5c, d). Deze injectiedosis was 2- tot 30-voudig lager dan die van andere onderzoeken naar aptameer-gemodificeerde magnetische nanodeeltjes-gebaseerde contrastmiddelen [44, 47, 48]. Dit resultaat gaf aan dat AptHER2 -MNS heeft een hoger targetingvermogen dan WMNC's of andere aptameer-gemodificeerde contrastmiddelen, en suggereerde ook dat het hoge contrastverhogende effect van AptHER2 -MNS kan worden verwacht ondanks een lagere dosis dan WMNC's. De contrastversterking deed zich vooral voor in de perifere bloedvaten en in het centrum van het tumorweefsel. Hoewel de perifere bloedvaten kort na de injectie van AptHER2 . donker werden -MNS, de contrastversterking in het midden van de tumorlaesie verscheen voor het eerst na 60 min en nam toe tot 120 min.

In vivo MR-beelden van HER2+-tumormuismodel met behulp van WMNC's (n = 3) of AptHER2 -MNS (n = 3). een T2- en T2*-gewogen MR-beelden bij de pre- of post-injectie van WMNC's. b Grafiek voor relatieve signaalintensiteit gemeten vanaf a . c T2- en T2*-gewogen MR-beelden bij de pre- of post-injectie van AptHER2 -MNS. d Relatieve signaalintensiteitsgrafiek en e het intensiteitshistogram van het tumorgebied gemeten vanaf c . v Histologische analysegegevens verkregen na MR-beeldvorming. Foutbalken werden weergegeven door positieve y - alleen as. Relatieve signaalintensiteiten van b , d , en e werden gemeten vanaf de rode ononderbroken ROI van a , c en Aanvullend bestand 1:Afbeelding S4

Om de zichtbare verandering in de contrastverbeteringseffecten voor en na de injectie van AptHER2 . te benadrukken -MNS, een histogramanalyse van de R2-signaalintensiteit werd uitgevoerd in de ROI's op de T2-gewogen MRI-beelden (figuur 5e). Omdat het T2-signaal duidelijk de negatieve verbetering is in T2-gewogen MRI-beelden, werd het weergegeven door R2. Na injectie van AptHER2 -MNS, het midden van het histogram is naar rechts verschoven. De toename van de contrastverbetering met ongeveer 10% werd waargenomen toen het verschil in het midden van de histogrammen werd berekend.

Om de aanwezigheid van AptHER2 . te bevestigen -MNS in de tumor histologisch werd Pruisische blauwe kleuring uitgevoerd (Fig. 5f). In Pruisisch blauw gekleurd weefsel, kern en cytoplasma werden gekleurd als een diepe of lichtroze kleur, en er werden verschillende blauwgekleurde stippen rond tumorcellen waargenomen. We namen aan dat de tumorweefsels blauw kleurden als AptHER2 -MNS richtte zich op de tumor. In de resultaten van de Pruisische blauwe kleuring werden de blauwe stippen waargenomen in de tumorweefsels en de weefselglaasjes van AptHER2 -MNS had ongeveer 3 keer zoveel blauwe stippen als die van WMNC's. Pruisische blauwe kleuring kan het Fe-ion in weefsels detecteren; het werd dus gebruikt om de accumulatie van het contrastmiddel op basis van IONP's in de tumorweefsels te bevestigen [44, 49, 50].

Conclusies

Concluderend hebben we bevestigd dat AptHER2 -MNS werkt als een in vivo op HER2 richtbaar MRI-contrastmiddel door middel van fysisch-chemische karakterisering en in vivo MRI-experimenten in muistumormodellen die HER2 tot expressie brengen. AptHER2 -MNS heeft een hoge relaxiviteit en specificiteit voor HER2 en vertoonde duidelijke contrastverhogende effecten ondanks een lagere toedieningsdosis dan andere T2-contrastmiddelen, vanwege de ijzeroxide-nanodeeltjes. Van dit contrastmiddel wordt verwacht dat het informatie verschaft over de expressie van HER2-kanker bij kankerpatiënten en zou kunnen worden gebruikt om HER2+-kankerpatiënten te monitoren tijdens chemotherapie met HER2-doelgeneesmiddelen. We verwachten dat de resultaten van dit werk een veelbelovende strategie zullen bieden voor de diagnose van kanker tot overexpressie van HER2 en voor de behandeling van patiënten.


Nanomaterialen

  1. Magnetic Resonance Imaging (MRI)
  2. Nanodiamanten voor magnetische sensoren
  3. Nanodeeltjes voor kankertherapie:huidige vooruitgang en uitdagingen
  4. Op cellen gebaseerde medicijnafgifte voor kankertoepassingen
  5. Nanotechnologie:van in vivo beeldvormingssysteem tot gecontroleerde medicijnafgifte
  6. Nieuwe biocompatibele Au Nanostars@PEG-nanodeeltjes voor in vivo CT-beeldvorming en eigenschappen voor nierklaring
  7. Magnetic Gold Nanoparticle-Labeled Heparanase Monoclonal Antibody en de daaropvolgende toepassing voor Tumor Magnetic Resonance Imaging
  8. Eenvoudige synthese van oppervlaktegefunctionaliseerde magnetische nanocomposieten voor effectieve selectieve adsorptie van kationische kleurstoffen
  9. Seed-Mediated Synthese van afstembare Aspect-Ratio gouden nanostaafjes voor Near-Infrared Photoacoustic Imaging
  10. Dubbele integrine αvβ 3 en NRP-1-Targeting paramagnetisch liposoom voor vroege detectie van tumoren in beeldvorming met magnetische resonantie
  11. Een nieuw contrastmiddel op basis van magnetische nanodeeltjes voor cholesteroldetectie als biomarker voor de ziekte van Alzheimer