Industriële fabricage
Industrieel internet der dingen | Industriële materialen | Onderhoud en reparatie van apparatuur | Industriële programmering |
home  MfgRobots >> Industriële fabricage >  >> Industrial materials >> Nanomaterialen

Gelyofiliseerde hybride nanogestructureerde lipidedragers om de cellulaire opname van verapamil te verbeteren:statistische optimalisatie en in vitro evaluatie

Abstract

Verapamil is een calciumantagonist en zeer effectief bij de behandeling van hypertensie, angina pectoris en andere ziekten. Het medicijn heeft echter een lage biologische beschikbaarheid van 20 tot 35% vanwege het first-pass-effect. Het hoofddoel van deze studie was om hybride verapamil-dextran nanogestructureerde lipidedragers (HVD-NLC's) te ontwikkelen in een poging de cellulaire opname van verapamil te verhogen. De formuleringen zijn met succes bereid met een high-shear homogenisatiemethode en statistisch geoptimaliseerd met behulp van 2 4 volledig factorieel ontwerp. De formuleringen van HVD-NLC's werden gevriesdroogd met trehalose als cryoprotectant. De resultaten toonden aan dat de geoptimaliseerde formule (VER-9) een deeltjesgrootte (PS), polydispersiteitsindex (PDI) en het percentage van insluitingsefficiëntie (%EE) van 192,29 ± 2,98, 0,553 ± 0,075 en 93,26 ± 2,66% had. , respectievelijk. De opname van dextransulfaat in de formulering had de afgifte van verapamil verlengd (~ -85% in 48 uur) in het gesimuleerde maagvocht (pH 1,2) en gesimuleerd darmvocht (pH 6,8). De differentiële scanningcalorimetrie-analyse toonde geen chemische interactie aan tussen verapamil en de hulpstoffen in de formulering. Terwijl groothoekröntgenverstrooiingsstudies het medicijn in de amorfe vorm aantoonden na de opname in de NLC's. De transmissie-elektronenmicroscopie en scanning-elektronenmicroscopiebeelden onthulden dat de nanodeeltjes een bolvorm hadden. De cellulaire opnamestudie met Caco-2-cellijn toonde een hogere verapamilopname van HVD-NLC's in vergelijking met verapamiloplossing en verapamil-dextran-complex. De geoptimaliseerde formulering (VER-9) bewaard in de gekoelde toestand (5 ° C ± -3 ° C) was 6 maanden stabiel. Concluderend waren de HVD-NLC's potentiële dragers van verapamil omdat ze de cellulaire opname van het medicijn aanzienlijk verbeterden.

Achtergrond

Verapamil is een L-type calciumkanaalblokker van de fenylalkylamineklasse en een antagonist van de α-adrenerge receptor. Het wordt veel gebruikt voor de behandeling van hypertensie, supraventriculaire tachyaritmie, angina pectoris en clusterhoofdpijn. Volgens het classificatiesysteem van de biofarmaceutica is verapamil geclassificeerd als klasse I-medicijn. Van de geneesmiddelen in deze klasse is bekend dat ze na orale toediening een goede absorptie hebben via het darmmembraan (≤  90%). Echter, slechts 20 tot 35% van de orale dosis verapamil wordt in de bloedcirculatie gebracht als gevolg van het snelle first-pass metabolisme via de portale circulatie [1]. Daarom is het belangrijk om geschikte dragers te ontwikkelen die de cellulaire opname van verapamil kunnen verbeteren en mogelijk de biologische beschikbaarheid ervan kunnen verbeteren.

De tweede generatie, op lipiden gebaseerde nanoformuleringen zoals nanogestructureerde lipidedragers (NLC's) vertoonden een groot potentieel voor gebruik bij de afgifte van therapeutische middelen [2, 3]. De NLC's hebben een hogere chemische en fysische stabiliteit in vergelijking met de vaste lipide-nanodeeltjes (SLN's), en ze hebben ook eigenschappen voor gecontroleerde afgifte. Bovendien vertonen NLC's een hoge laadcapaciteit voor medicijnmoleculen door een minder geordend kristalrooster van lipidematrix te vormen, dat de uitzetting van het medicijn tijdens opslag zou kunnen minimaliseren. NLC's worden bereid uit lipiden, die de vorming van chylomicronen in de darmen versnellen en de absorptie van NLC's vergemakkelijken die de biologische beschikbaarheid van geneesmiddelen kunnen verhogen [4]. Daarom ontwikkelde de huidige studie hybride verapamil-dextran nanogestructureerde lipidedragers (HVD-NLC's) om de cellulaire opname van het medicijn te verbeteren, wat kan leiden tot een grotere biologische beschikbaarheid.

De meeste lipofiele geneesmiddelen kunnen gemakkelijk in de NLC's worden opgenomen, maar het is vrij moeilijk om hydrofiele geneesmiddelen zoals verapamil in een op lipiden gebaseerde nanoformulering te vangen. In de huidige studie werden dus hybride NLC's met een tegenion-dextraansulfaat-natrium bereid voor het verbeteren van de inkapseling van verapamil en het verlengen van de afgifte ervan uit de NLC's (figuur 1). De HVD-NLC's-formuleringen zijn bereid met de hot en high-shear homogenisatiemethode en statistisch geoptimaliseerd met behulp van een 2 4 volledig factorieel ontwerp. In het onderzoek werden twee soorten lipiden gebruikt, het vaste lipide, Compritol 888 ATO® en het vloeibare lipide-oliezuur. De bereide HVD-NLC's werden gekarakteriseerd op hun deeltjesgrootte (PS), zeta-potentiaal (ZP), polydispersiteitsindex (PDI) en het percentage geneesmiddelinvangingsefficiëntie (%EE). De geoptimaliseerde HVD-NLC's werden gevriesdroogd met trehalose als cryoprotectant. De in vitro afgifteprofielen werden uitgevoerd in alkalische en zure omgevingen. De in vitro cellulaire opnamestudie van verapamil uit de geselecteerde HVD-NLC's werd uitgevoerd met behulp van Caco-2-cellijnen. Het stabiliteitsonderzoek van de geoptimaliseerde formulering werd gedurende 6 maanden uitgevoerd onder drie verschillende omstandigheden (5 °C ± 3 °C, 25 °C ± 2 °C/60% RH ± 5% RH en 40 °C ± 2 °C/ 75% RV ± 5% RV).

Vorming van een elektrostatisch complex van in water oplosbaar kationisch geneesmiddel verapamilhydrochloride en tegenionpolymeer dextransulfaat-natrium

Methoden

Materiaal

Verapamil HCl werd gekocht bij de farmaceutische fabriek in Wenzhou (Wenzhou, China). Compritol 888 ATO® (Glyceroldibehenaat EP-Glycerylbehenaat NF) werd verkregen van Gattefosse (Saint-Priest, Frankrijk). Oliezuur werd ingekocht bij R&M Chemicals (Essex, VK). Tween 80® (Polysorbate 80) werd gekocht bij Euro chemo-pharma Sdn. Bhd. (Penang, Maleisië). Poloxamer 188 (Pluronic® F-68) werd verkregen van Molekula (Dorset, VK). Trehalose, Sephadex® G-25 en foetaal runderserum (FBS) werden verkregen van Sigma-Aldrich (St. Louis, MO, VS). De Caco-2-cellijn werd verkregen van ATCC (Virginia, VS). Penicilline-streptomycine-oplossing 100 X werd verkregen van Biowest (Nuaillé, Frankrijk). Trypsine 0, 25% en Dulbecco's gemodificeerde Eagles-medium (DMEM) werden verkregen van GE Healthcare Life Sciences, Hyclone-laboratoria (Utah, VS). Passive Lysis Buffer, 5X werd gekocht bij Promega (Wisconsin, VS).

Methoden

Voorbereiding van HVD-NLC's

HVD-NLC's werden bereid door de hete high-shear homogenisatiemethode. De lipidefase bestond uit Compritol ATO 888® en oliezuur werd gesmolten door verhitting tot 85°C (10°C boven het smeltpunt van vast lipide). De benodigde hoeveelheid verapamil werd afgewogen en opgelost in de waterige fase die een mengsel van Tween 80® en poloxamer 188 bevat in een verhouding van 1:1 w /w . De waterige fase werd verwarmd tot dezelfde temperatuur als de lipidefase. De waterige fase werd in de lipidefase gegoten en gehomogeniseerd met behulp van een digitale T25 Ultra-Turrax® homogenisator, IKA® (Staufen, Duitsland) bij 24.000 rpm, 85°C. Vervolgens werd de waterige dextraansulfaatoplossing (1:1 verhouding tot verapamil) tijdens het homogenisatieproces langzaam aan het mengsel toegevoegd. De bereide HVD-NLC's werden afgekoeld tot kamertemperatuur (25 ± 2 °C).

Statistische optimalisatie van de formuleringsparameters met behulp van 2 4 Volledig factorieel ontwerp en wenselijkheidsfunctiebenaderingen

Een volledig factorieel ontwerp met twee niveaus en vier variabelen werd uitgevoerd om het effect van formuleringsonafhankelijke variabelen (factoren) op de kenmerken (afhankelijke variabelen of responsen) te optimaliseren en te evalueren (tabel 1). De echte hoge en lage niveaus voor elke onafhankelijke variabele werden geselecteerd op basis van de voorstudies.

De experimentele reacties verkregen van de afhankelijke variabelen waren de resultaten van de individuele en gecombineerde effecten van de vier onafhankelijke variabelen. Dit experimentele ontwerp op twee niveaus biedt voldoende gegevens om aan de volgende polynoomvergelijking te voldoen.

$$ X={\upbeta}_0+{\upbeta}_1A+{\upbeta}_2B+{\upbeta}_3C+\upbeta 4D+{\upbeta}_{12} AB+{\upbeta}_{13}\mathrm{AC}+ {\upbeta}_{14}\ \mathrm{AD}+{\upbeta}_{23}\mathrm{BC}+{\upbeta}_{24}\mathrm{BD}+{\upbeta}_{34 }\wiskunde{CD} $$ (1)

Waar X is een afhankelijke variabele; β0 is een onderschepping; β1 , β2 , β3 , en β4 zijn de coëfficiënten van de onafhankelijke variabelen A , B , C , en D respectievelijk. Terwijl β12 , β13 , 14 , β23 , 24 , en β34 zijn de respectieve interacties (d.w.z. AB, AC, AD, BC, BD en CD). De experimentele resultaten werden geanalyseerd door een Design-Expert®-softwareversie 6.0.10 (Stat-Ease, Inc., Minneapolis, MN, VS) gevolgd door variantieanalyse (ANOVA) om de significantie van factoren en hun interacties te bepalen. De statistische analyse werd als significant beschouwd toen de p waarden waren < 0,05.

De uiteindelijke formuleringen werden geselecteerd op basis van de wenselijkheidsfunctiebenadering. De wenselijkheidsfunctie combineert alle reacties in één variabele om de optimale niveaus van de bestudeerde factoren te voorspellen. Daarom werd de wenselijkheid bepaald om de geoptimaliseerde formuleringen te selecteren met de laagste deeltjesgrootte (PS) en polydispersiteitsindex (PDI) en de hoogste waarden voor zetapotentiaal (ZP) en percentage insluitingsefficiëntie (%EE). De wenselijkheidsfunctie zet alle antwoorden om in een gemeenschappelijke schaal (0, 1) en combineert ze met een geometrisch gemiddelde voor de optimalisatie van de algemene metriek. De wenselijkheidswaarde 1 geeft een aanvaardbare waarde (meest gewenste waarde) voor de antwoorden aan, terwijl de wenselijkheidswaarde 0 een onaanvaardbare waarde aangeeft.

Metingen van deeltjesgrootte, polydispersiteitsindex en zeta-potentieel

De PS en PDI van de bereide nanodeeltjes werden gemeten met behulp van een fotoncorrelatiespectrometer (Zetasizer 1000HS/3000HS, Malvern Instrument, Malvern, VK). De ZP werd bepaald met behulp van een zeta-potentiaalanalysator (Zetasizer nano-serie, Nano Z-red badge, Malvern Instrument, Malvern, VK). Alle monsters werden verdund met gefilterd gedestilleerd water (0,45 μm nylon filter) en metingen werden in drievoud uitgevoerd.

Bepaling van het percentage beknellingsefficiëntie

Het bereide monster dat vrij verapamil-dextran-complex en HVD-NLC's bevat, werd gescheiden door middel van een minikolom-centrifugatiemethode met Sephadex® G25. Een volume van 1 ml van het monster werd bovenop de kolom geplaatst en vervolgens 2 minuten bij 2000 tpm gecentrifugeerd. Het eluens dat HVD-NLC's bevatte, werd verzameld en gevriesdroogd met behulp van een vriesdroger (Labconco, Free Zone Freeze Dry Systems, Kansas City, VS).

De gevriesdroogde HVD-NLC's (10 mg) werden opgelost in chloroform en onder stikstofgas bij 40°C ingedampt. Het gedroogde monster werd vervolgens opgelost in 1 ml gedestilleerd water, 2 minuten gevortext en 5 minuten gecentrifugeerd (Eppendorf, Duitsland) bij 12.000 tpm. Het supernatant werd verzameld en de hoeveelheid verapamil werd bepaald met behulp van een gevalideerde high-performance vloeistofchromatografie (HPLC)-methode. Het %EE werd berekend met behulp van de volgende vergelijking:

$$ \%\mathrm{EE}=\frac{\mathrm{Weight}\ \mathrm{of}\ \mathrm{encapsulated}\ \mathrm{verapamil}}{\mathrm{Initial}\ \mathrm{weight}\ \mathrm{of}\ \mathrm{verapamil}}\kern0.5em \times \kern0.75em 100 $$ (2)

De HPLC-analyse voor kwantificering van verapamil werd uitgevoerd met behulp van een Shimadzu-chromatografisch systeem uitgerust met een LC 20AD-afgiftepomp (Kyoto, Japan) en een Phenomenex C18-kolom (250  ×  4,6 mm). De mobiele fase bestond uit 20 mM ammoniumacetaat en acetonitril in een verhouding van 40:60 (v /v ). De pH van de mobiele fase werd met ijsazijn op pH 6,5 gebracht. Het injectievolume was 20 μL en de detectiegolflengte voor verapamil was ingesteld op 278 nm en de stroomsnelheid was vastgesteld op 1,5 ml/min.

Lyofilisatieonderzoek

De lyofilisatie werd 24 uur bij -40 ° C uitgevoerd met behulp van een Labconco, FreeZone Freeze Dry Systems (Kansas City, VS). Vijf soorten veelgebruikte suikers, waaronder mannitol, fructose, sucrose, lactose en trehalose met een lipide:cryoprotectant-verhouding van 1:1 werden gescreend om een ​​geschikt cryoprotectant voor het vriesdrogen van de HVD-NLC's te selecteren. Het cryoprotectant dat de laagste gemiddelde PS en PDI van de gevriesdroogde formulering produceerde na reconstitutie in gedestilleerd water, werd geselecteerd voor verder onderzoek.

In de volgende studie werd de HVD-NLCs-formulering gemengd met de geselecteerde cryoprotectant met behulp van twee methoden. Bij de eerste methode werd het cryoprotectant toegevoegd na bereiding van de HVD-NLC-formulering en werd het genoemd als "na het homogenisatieproces". Terwijl bij de tweede methode het cryoprotectant werd toegevoegd tijdens de bereiding van de HVD-NLC-formulering, en het werd genoemd als "tijdens het homogenisatieproces". Bij de eerste methode werden verschillende lipiden en cryoprotectantverhoudingen van 1:1, 1:2, 1:4, 1:6 en 1:8 bereid en gevriesdroogd. De gevriesdroogde HVD-NLC-formuleringen werden opnieuw gedispergeerd in het gefilterde, gedestilleerde water (0,45 μm nylonfilter) en de monsters werden beoordeeld op gemiddelde PS, PDI en %EE. De lipide:cryoprotectant-verhoudingen die de laagste PS en PDI en het hoogste %EE produceerden, werden geselecteerd voor verder onderzoek in de tweede mengmethode.

In vitro-vrijgaveonderzoek

De in vitro afgiftestudie van verapamil uit NLC's werd uitgevoerd met behulp van een dialysezak die in een gesimuleerd darmvloeistof (pH 6,8) of gesimuleerd maagvloeistof (pH 1,2) medium werd geplaatst. In deze studie werd 2 ml HVD-NLC's-dispersie in de dialysezak gedaan (12.000 Da MW-grenswaarde). De zak werd afgesloten en vervolgens ondergedompeld in 150 ml voorverwarmd lossingsmedium. Het afgifteonderzoek werd uitgevoerd op een magnetische roerder met hete plaat die was ingesteld op een roersnelheid van 100 tpm en 37 °C. Met geplande tijdsintervallen van 0,08, 0,25, 0,5, 1, 2, 4, 6, 8, 10, 12, 24, 48 en 72 uur werd 1 ml monster teruggetrokken en vervangen door hetzelfde volume vers medium. De vrijgekomen verapamilconcentratie werd bepaald door de HPLC.

Differentiële scanningcalorimetrie

De differentiële scanningcalorimetrie (DSC) -analyse werd uitgevoerd met behulp van een Perkin-Elmer Pyris 6 DSC (Perkin-Elmer, Beaconsfield, VK). De monsters werden gewogen (5-7 mg) in een aluminium pan en verzegeld met behulp van een standaard pan-crimperpers voor monsters (Perkin-Elmer, Beaconsfield, VK). DSC-curven werden geregistreerd met een snelheid van 10 °C/min van 0 tot 260 °C.

Groothoek röntgenverstrooiing

De groothoek röntgenverstrooiing (WAXS) θ/2θ-analyse werd uitgevoerd bij kamertemperatuur met behulp van een PANalytical X'Pert PRO MRD PW3040 (Almelo, Nederland) die Cu Kα-straling toepast. De monsters werden uitgevoerd bij een temperatuurbereik van 2-60 °C met een scansnelheid van 5 °C/min.

Transmissie-elektronenmicroscoop en scanning-elektronenmicroscoop

De morfologie (d.w.z. vorm en grootte) van HVD-NLC's werd waargenomen door een transmissie-elektronenmicroscoop (TEM) met behulp van (Philips CM12, Eindhoven, Nederland). Een druppel verdunde HVD-NLCs-dispersie werd op een 400 mesh koperen rooster geplaatst, gevolgd door een negatieve kleuring met 2% fosfowolfraamzuur. Het voorbereide monster werd voor het TEM-onderzoek aan de lucht gedroogd.

De morfologie van gevriesdroogde HVD-NLC's werd waargenomen met behulp van een scanning elektronenmicroscoop (SEM) (Leo Supra 50 VP veldemissie SEM, Oberkochen, Duitsland). Het gevriesdroogde HVD-NLCs-monster werd gefixeerd op een aluminiumstomp en vervolgens gecoat met goud (10 nm dikte) in een sputterapparaat bij 15 mA gedurende 15 minuten. Het monster werd gevisualiseerd met behulp van een Oxford INCA energiedispersief röntgenmicroanalysesysteem met een versnellingsspanning van 10 kV.

Cellulaire opname van HVD-NLC's

De in vitro cellulaire opnamestudie van verapamil uit de HVD-NLCs-formulering werd onderzocht met behulp van een Caco-2-cellijn. De cellen werden gekweekt in DMEM-groeimedia aangevuld met 1% penicilline-streptomycine-oplossing en 10% FBS in een T-25-weefselkweekfles. Vervolgens werden de Caco-2-cellen verzameld en gezaaid in platen met 48 putjes, met een celdichtheid van 60.000 per putje met complete DMEM-media totdat de cellen confluent werden en een monolaag vormden op de bodem van de putplaat. Verschillende oplossingen die dezelfde concentratie verapamil bevatten, werden bereid door HVD-NLC's, verapamiloplossing en verapamil-dextrancomplex alleen met DMEM-media te verdunnen. Verapamil-oplossing en verapamil-dextran-complex werden als controles gebruikt. Vervolgens werden de volledige DMEM-media van Caco-2-cellen monolaag in platen met 48 putjes uitgewisseld met verschillende verdunningen van HVD-NLC's, verapamil-oplossing en verapamil-dextran-complex en gedurende 6 uur bij 37 ° C geïncubeerd. Na voltooiing van de incubatieperiode werden de HVD-NLC's, verapamiloplossing en verapamil-dextrancomplexmonsters uit de putjes verwijderd. Het residu van de testmonsters en dode cellen werden uit de monolagen verwijderd door driemaal te wassen met fosfaatgebufferde zoutoplossing (PBS). De cellen van de monolaag werden gelyseerd door passieve lysisbuffer (200 L) aan elk monsterputje toe te voegen. Monsters werden eruit gepipetteerd en gedurende 10 minuten bij 12.000 tpm gecentrifugeerd om de verapamil uit de cellen te extraheren. De supernatanten werden verzameld en de verapamilconcentratie werd gekwantificeerd met behulp van de HPLC.

Korte termijn stabiliteitsonderzoek

De kortetermijnstabiliteitsstudie van geoptimaliseerde HVD-NLC's-formulering werd uitgevoerd volgens de internationale raad voor harmonisatie van technische vereisten voor farmaceutische producten voor de mens (ICH) richtlijnen Q1A (R2). De vers bereide gevriesdroogde HVD-NLCs-formulering (VER-9) werd onder drie verschillende omstandigheden geplaatst (5 ± 3 °C, 25 ± 2 °C/60 ± 5% relatieve vochtigheid (RH) en 40 ± 2 °C/75 ± 5% RH) gedurende 6 maanden. De stabiliteit van de geoptimaliseerde formulering van HVD-NLC's werd onderzocht door PS, PDI, ZP en het totale geneesmiddelgehalte te meten na 0, 1, 3 en 6 maanden.

Statistische analyse

De resultaten werden geanalyseerd met behulp van eenrichtingsvariantieanalyse (ANOVA) en gevolgd door een post-hoc Tukey-HSD. De statistische analyse werd uitgevoerd met behulp van IBM® SPSS® Statistical-software (versie 22, NY, VS). Alle waarden werden uitgedrukt als het gemiddelde en de standaarddeviatie (gemiddelde   ±  SD). Het verschil was statistisch significant wanneer p < 0.05.

Resultaten en discussie

Analyse met 2 4 Volledig fabrieksontwerp

De waarden van de geselecteerde onafhankelijke variabelen, dwz homogenisatietijd (A), vaste lipideconcentratie (B), vloeibare lipideconcentratie (C) en oppervlakteactieve stofconcentratie (D) en de verkregen resultaten van de geselecteerde responsen, dwz PS, PDI , ZP en %EE worden weergegeven in tabel 2. Elke onafhankelijke variabele en hun interacties werden statistisch geëvalueerd met behulp van de ANOVA. De polynoomcoëfficiënt voor elke afhankelijke variabele werd gegenereerd door de Design-Expert®-software om het effect van elke onafhankelijke variabele te kwantificeren, zoals weergegeven in Vgl. 3, 4, 5 en 6. De vergelijkingen vertegenwoordigden alleen de significante factoren en hun interacties.

$$ \mathrm{PS}=185.73-7.64A-2.13C-12.03D-2.15\mathrm{AC}+2.16\mathrm{BD}-3.53\mathrm{CD} $$ (3) $$ \mathrm{PDI }=0.48-0.060C-0.029\mathrm{AC}+0.039\mathrm{CD} $$ (4) $$ \mathrm{ZP}=-45.94-2.06C-1.41D+0.91\mathrm{BD}-1.09 \mathrm{CD} $$ (5) $$ \%\mathrm{EE}=81.40-4.31A+8.45D-2.13\mathrm{AD}+1.90\mathrm{BD} $$ (6)

waar A is de homogenisatietijd (min), B is de vaste lipideconcentratie (mg), C is de vloeibare lipideconcentratie (mg), en D is de concentratie van oppervlakteactieve stoffen (mg). De positieve en negatieve tekens vóór elke factor of interactiefactoren in de vergelijkingen vertegenwoordigen respectievelijk een synergetisch of een antagonistisch effect. De responsoppervlaktegrafieken werden gegenereerd om het gelijktijdige effect van elke factor of factorinteracties op de responsparameters te observeren.

Effecten van variabelen op de gemiddelde deeltjesgrootte

Zoals getoond in Vgl. 3, factoren A , C , en D hebben antagonistische effecten op de deeltjesgrootte (PS). Geconcludeerd kan worden dat het verhogen van de homogenisatietijd (factor A ) wordt tegelijkertijd geassocieerd met een significante afname van de PS van NLC's (p < 0.05). Dit is waarschijnlijk te wijten aan de hoge afschuifkracht van homogenisatie die de lipidebolletjes efficiënt in kleinere deeltjes breekt. Evenzo, het verhogen van de vloeibare lipideconcentratie (C ) bleek tegelijkertijd de PS van de NLC's te verlagen. Dit kan worden toegeschreven aan het vermogen van oliezuur om de viscositeit van het systeem te verlagen, evenals de oppervlaktespanning in combinatie met Compritol 888 ATO®, waardoor een kleinere deeltjesgrootte van NLC's wordt geproduceerd. Het vermogen van het vloeibare lipide om de viscositeit van het systeem te verlagen wanneer het wordt gecombineerd met het vaste lipide werd ook gerapporteerd door Jenning et al. toen ze een SLN-dispersie maakten [5]. De auteurs merkten op dat het verhogen van de vloeibare lipideconcentratie van 0 tot 38% in de lipidematrixsamenstelling de deeltjesgrootte zou verminderen. Bovendien verhoogt het verhogen van de concentratie van oppervlakteactieve stoffen (D ) zou de PS verlagen, omdat een grotere hoeveelheid oppervlakteactieve stof die in het systeem aanwezig is, gemakkelijk de totale lipide-inhoud in de formulering zou emulgeren, en dus kleinere nanodeeltjes zou vormen.

Afbeelding 2 toont de significante (p < 0.05) effect van factoren (AC, BD en CD) interacties op de PS van de NLC. De positieve impact van factor (BD) en de negatieve impact van factoren (AC- en CD-interactie) toonden een significant effect op de NLC-deeltjesgrootte. De negatieve impact van factor (AC) toonde aan dat bij een langere homogenisatietijd en een hogere vloeibare lipideconcentratie een afname in PS veroorzaakte. De interactie tussen hogere concentraties vast lipide en oppervlakteactieve stof in de NLC-formulering (BD-interactie) toonde een significant positief effect op de deeltjesgrootte, wat resulteerde in grotere deeltjesgrootte. Daarentegen vertoonde de interactie tussen hogere concentraties van het vloeibare lipide en oppervlakteactieve stof (CD-interactie) een significant negatief effect op de deeltjesgrootte waar kleinere afmetingen werden geproduceerd.

Responsoppervlakplot die de significantie weergeeft (p < 0.05) effect van homogenisatietijd, vloeibare lipideconcentratie, oppervlakteactieve stofconcentratie en interactie tussen a AC, b BD, en c CD op de PS van HVD-NLC's. A homogenisatietijd, B vast lipide, C vloeibaar lipide, D oppervlakteactieve stof

Effecten van variabelen op PDI

Zoals geïllustreerd in Vgl. 4 is aangetoond dat oliezuur een negatief effect heeft op de PDI, wat betekent dat een toenemende oliezuurconcentratie de PDI-waarden zou verlagen en zou leiden tot een betere verdeling van de NLC-deeltjes. Een vergelijkbaar effect van oliezuur op NLC werd ook waargenomen door sommige onderzoeken [6]. Figuur 3 geeft de interactie weer tussen de homogenisatietijd en de vloeibare lipideconcentratie (AC-interactie). Deze interactie vertoonde een significant negatief effect op de PDI. Het betekent dat een langere homogenisatietijd en een hogere vloeistoflipideconcentratie zouden leiden tot een verlaging van de PDI-waarden. Bovendien toonde de interactie tussen de vloeibare lipide- en oppervlakteactieve stofconcentraties (CD-interactie) een synergetisch effect op de PDI-waarden. Het gelijktijdig verhogen van de concentraties van vloeibare lipiden en oppervlakteactieve stoffen zou dus de PDI-waarden verhogen en minder homogene HVD-NLCs-deeltjes produceren. Dit kan te wijten zijn aan een verdere toename van de concentratie van oppervlakteactieve stoffen boven de geoptimaliseerde waarde, wat een accumulatie van de oppervlakteactieve stof aan de buitenoppervlakken van nanodeeltjes kan veroorzaken, wat op zijn beurt de PDI-waarden verhoogt. Hetzelfde patroon werd ook waargenomen door Shamma et al., waarbij het verhogen van de concentratie van oppervlakteactieve stoffen een toename van de PDI-waarden van NLC's veroorzaakte [7].

Responsoppervlakplot met de significante (p < 0.05) effect van vloeibare lipideconcentratie en interacties tussen a AC en b CD op PDI van HVD-NLC's. A homogenisatietijd, C vloeibaar lipide, D oppervlakteactieve stof

Effecten van variabelen op ZP

De formuleringen van HVD-NLC's hadden de negatieve lading vanwege de ionisatie van glycerylbehenaat (een vetzuur in Compritol 888 ATO®), oliezuur en dextraansulfaatresidu. Gebaseerd op vgl. 5, had het verhogen van de hoeveelheid oliezuur een negatief effect op de nanodeeltjes, en resulterend in een toename van de negatieve lading van de nanodeeltjes, waardoor de ZP van HVD-NLC's toenam. Dit is mogelijk te wijten aan overmatige ionisatie van overvloedige carboxylgroepen in het oliezuur (vloeibare lipide) [8]. Bovendien vertoonde glycerylbehenaat (vast lipide) ook een negatief effect op de ZP-waarden, waarbij het verhogen van de concentratie de ZP van nanodeeltjes verhoogt. Dit komt door een hogere ionisatie van carbonzuur in het glycerylbehenaat, wat leidt tot hogere negatieve ladingen aan het buitenoppervlak van de nanodeeltjes.

De BD-interactie had een significant positief effect op de ZP van NLC's, terwijl CD-interactie een negatief effect vertoonde (Fig. 4). Het verhogen van de concentratie van vast lipide en het verlagen van de concentratie van oppervlakteactieve stof vermindert de negatieve lading van de nanodeeltjes en verlaagt de ZP-waarden. Waarschijnlijk zou in dit stadium een ​​lagere concentratie van oppervlakteactieve stoffen niet in staat zijn om de totale hoeveelheid vast lipide te ioniseren, wat zou leiden tot het verminderen van de negatieve ladingen op het oppervlak van nanodeeltjes, waardoor de ZP van HVD-NLC's wordt verminderd. Bovendien zou het gelijktijdig verhogen van de concentratie van vloeibaar lipide en oppervlakteactieve stof (CD-interactie) de ZP-waarde van HVD-NLC's aanzienlijk verhogen. Dit komt omdat er meer carbonzuur zou worden geïoniseerd in aanwezigheid van een hogere concentratie oppervlakteactieve stoffen in de formulering.

Responsoppervlakplot met de significante (p < 0.05) effect van vloeibare lipideconcentratie, oppervlakteactieve stofconcentratie en interacties tussen a BD en b CD op de ZP van HVD-NLC's. B vast lipide, C vloeibaar lipide, D oppervlakteactieve stof

Effecten van variabelen op %EE

Vergelijking 6 toonde aan dat het aanzienlijk verhogen van de homogenisatietijd (p <-0,05) verlaagt het %EE van het geneesmiddel. Een langere homogenisatietijd zou de medicijnmoleculen die aan het buitenoppervlak van de nanodeeltjes zijn bevestigd kunnen strippen of afpellen, wat resulteerde in een lager %EE van het medicijn in de HVD-NLC's. Daarentegen resulteerde het verhogen van de concentratie van oppervlakteactieve stoffen in een hoger %EE van het geneesmiddel in de HVD-NLC's. Dit zou te wijten kunnen zijn aan een hogere concentratie van oppervlakteactieve stoffen, waardoor de buitenste oppervlaktecoating van NLC's zou toenemen, waar een deel van het medicijn erin zou worden opgesloten. Zhuang et al. en Das et al. suggereerde dat een adequate concentratie van oppervlakteactieve stof essentieel is voor de solubilisatie van geneesmiddelmoleculen in het lipidenrooster en aan het buitenoppervlak van nanodeeltjes [9, 10].

Zoals weergegeven in figuur 5, had AD-interactie een significante (p <-0,05) negatieve impact, waarbij het verhogen van de homogenisatietijd en het verminderen van de hoeveelheid oppervlakteactieve stof het %EE van het geneesmiddel in de HVD-NLC's verlaagt. Daarentegen vertoonde de interactie tussen vaste lipide- en oppervlakteactieve stofconcentraties (BD-interactie) een positief effect op %EE van het geneesmiddel. Daarom zal het verhogen van de concentratie van vast lipide en oppervlakteactieve stof het %EE van het geneesmiddel in de HVD-NLC's verhogen. Dit is waarschijnlijk te wijten aan de hogere concentratie van oppervlakteactieve stoffen die de overtollige geneesmiddelmoleculen zou oplossen, en tegelijkertijd heeft een grotere hoeveelheid vaste lipiden in het systeem de overtollige geneesmiddelmoleculen geaccommodeerd, waardoor het %EE van het geneesmiddel in de HVD- NLC's.

Responsoppervlakplot met de significante (p < 0.05) effect van homogenisatietijd, vloeibare lipideconcentratie, oppervlakteactieve stofconcentratie en interacties tussen a AD en b BD op EE van verapamil in HVD-NLC's. A homogenisatietijd, B vast lipide, D oppervlakteactieve stof

Selectie van geoptimaliseerde HVD-NLC's met behulp van de wenselijkheidsfunctie

De HVD-NLC-formuleringen met de code nrs. VER-9, VER-11, VER-13 en VER-15 hadden hogere wenselijkheidswaarden van respectievelijk 0,863, 0,852, 0,811 en 0,840. Deze formuleringen werden geselecteerd voor verder onderzoek omdat de wenselijkheidswaarden dichter bij 1 lagen. De individuele en gecombineerde wenselijkheidsfunctie van alle responsen voor de geselecteerde formuleringen is weergegeven in figuur 6. De gemiddelde PS, PDI, ZP en %EE hiervan formuleringen lagen in het bereik van respectievelijk 173,46 ± 0,757 tot 190,3 ± 8,22, 0,451 ± 0,033 tot 0,501 ± 0,019, − 46,73 ± 1,13 tot − 49,16 ± 1,55 en 93,95 ± 4,10 tot 98,81 ± 1,01.

Bar graph displaying the individual and combined desirability of several responses on selected HVD-NLCs formulations. een VER-9, b VER-11, c VER-13, and d VER-15

Lyophilization Study

Lyophilization is one of the commonly used methods in the pharmaceutical field to change aqueous formulation into the dried form to prolong the physical and chemical stability of the nanoparticle during storage [11, 12]. However, the lyophilization step produces various stresses to the sample during the process. So, the need of cryoprotectant is essential to avoid the stress condition and protect the sample. Among the screened cryoprotectants, trehalose was found to be the most suitable one for protecting the HVD-NLCs formulations from aggregation after the lyophilization process. The HVD-NLCs formulations protected with trehalose had the smallest particle size and lowest PDI (Table 3). Trehalose offers many advantages over other cryoprotectants including less chemical interactions and exhibit higher glass transition temperature which may help to prolong the stability of nanoparticles. Furthermore, trehalose has been demonstrated as an efficient cryoprotectant for freeze drying of Compritol 888 ATO® (Glyceryl behenate) in the lipid-based nanoparticles [13, 14]. Thus, in the present study, trehalose was selected as cryoprotectant for the HVD-NLCs formulations.

In the next study, different ratios of trehalose were used in the HVD-NLCs formulations after or during the homogenization process. Table 4 shows the effects of different ratios of trehalose added into the formulations after homogenization on PS, PDI, and %EE.

The mean PS was found in the nano size range, while PDI was < 1 in all ratios of lipids to trehalose used in the study. However, the %EE of verapamil was decreased significantly with increasing the ratio of trehalose to lipids. The %EE of lipid:trehalose at the ratio of 1:1 was significantly higher than the lipid:trehalose ratio of> 1:1. Increasing the amount of trehalose beyond the lipid trehalose ratio of 1:1 enhanced the removal of verapamil from the verapamil-dextran sulfate complex. This is possibly due to the interaction between trehalose and dextran at the outer surface of nanoparticles, which promotes the displacement of verapamil from the verapamil-dextran sulfate complex and hence, lowers the %EE of drug in the HVD-NLCs. The interaction between trehalose and dextran takes place due to the formation of sugar-salt complex (trehalose-dextran complex), in that the trehalose (sugar) competes with cationic verapamil and forms complex with polyanionic dextran [15]. Miller et al. measured the viscosity and glass transition temperature of trehalose with boric acid and proposed the formation of chemical complex between trehalose and borate ion (B(OH)4 ) [15]. Therefore, based on the obtained results, the lipid to trehalose ratios of 1:1 and 1:2 were selected for the next study of trehalose addition during homogenization. Table 5 shows that the results of PS, PDI, and %EE were significantly better when trehalose were added during homogenization. This could be due to better mixing of trehalose in the HVD-NLCs formulation by the homogenization process. It is evident from the data that there was no significant difference in the %EE of lipid:trehalose ratios of 1:1 and 1:2. Therefore, formulation VER-9 and VER-11 at lipid:trehalose ratio of 1:1 was selected for further studies.

In Vitro Release of HVD-NLCs

The release profile of verapamil solution from the selected HVD-NLCs formulations (VER-9 and VER-11) in SGF and SIF are shown in Fig. 7. The release profile of verapamil from the VER-9 and VER-11 formulations was significantly longer than verapamil solution in both SGF and SIF media. Verapamil was loaded as an ionic complex with dextran sulfate in the HVD-NLCs formulation. This could be the reason for the sustained release of verapamil from the HVD-NLCS. The formulations released about ~ 85% of verapamil after 48 h and the drug had a prolonged release profile up to 72 h. On the other hand, the verapamil solution released approximately 99% of verapamil within 4 h. The release profiles of the selected formulations VER-9 and VER-11 were found almost similar in SGF and SIF release media. However, the release of verapamil from VER-9 was found slightly better as compared to VER-11 in the SGF release medium. The percentage cumulative release of verapamil at 72 h from VER-9 (95.91 ± 1.40) was found significantly higher as compared to VER-11 (90.67 ± 1.16) in the SGF medium. Therefore, VER-9 was selected as a final formulation and proceeded for further investigations.

Cumulative percentage of verapamil released in a SIF (pH 6.8) and b SGF (pH 1.2) release media for 72 h

DSC Study

The DSC analysis of verapamil, dextran sulfate, Compritol 888 ATO®, poloxamer 188, trehalose, physical mixture (including Compritol 888 ATO®, poloxamer 188, trehalose, verapamil, and dextran sulfate), lyophilized blank formulation (Placebo), and lyophilized HVD-NLCs formulation (VER-9) are shown in Fig. 8. Verapamil, dextran sulfate, Compritol 888 ATO®, poloxamer 188, and trehalose had the melting peak at 144.96 °C, 220.41 °C, 72.46 °C, 50.80 °C, and 100.13 °C, respectively. The thermograms showed that there was no significant shift in the peaks of physical mixture, lyophilized blank formulation, and HVD-NLCs formulation (VER-9) when compared to the individual peak components such as Compritol 888 ATO®, poloxamer 188, trehalose, verapamil, and dextran sulfate. This indicated the physical compatibility between the components. The endothermic peak of verapamil at 144.96 °C was no longer seen in the thermogram of HVD-NLCs formulation (VER-9) (Fig. 8f), which could be due to verapamil that had changed to amorphous form when incorporated in the HVD-NLCs matrix [16].

DSC thermograms of a Compritol 888 ATO, b Polomxamer 188, c verapamil HCl, d dextran sulfate, e trehalose, f verapamil HCl and dextran sulfate physical mixture, g physical mixture (including Compritol 888 ATO, poloxamer 188, trehalose, verapamil, and dextran sulfate), h placebo, and i HVD-NLCs formulation (VER-9)

WAXS Study

The WAXS/2θ scans of pure verapamil, dextran sulfate, bulk Compritol 888 ATO®, trehalose, lyophilized blank formulation (containing Compritol 888 ATO®, oleic acid, poloxamer 188, Tween 80®, trehalose, and dextran sulfate), and lyophilized HVD-NLCs formulation (VER-9) are shown in Fig. 9. The diffraction peaks of pure verapamil showed specific crystalline nature of the drug at 2θ scattered angles 14.42°, 16.67°, 17.07°, 18.07°, 18.82°, 20.22°, 23.77°, and 26.27° [17]. However, the WAXS/2θ scans of HVD-NLCs formulation (VER-9) showed that the peaks of verapamil diminished indicating a decrease in the crystallinity of the drug when incorporated in the lipids of HVD-NLCs. The scan also showed the predominant peaks at 2θ scattered angles 12.47°, 15.17°, 16.87°, 21.07°, and 23.82° which possibly attributed to the crystalline structure of Compritol 888 ATO® and trehalose because none of these peaks showed similarity with any of the pure verapamil peaks [10]. The results suggested that verapamil was in the amorphous form when incorporated in the HVD-NLCs formulation. The Compritol 888 ATO® revealed polymorphic crystalline transformation upon heating, whereby it changed to a more stable form, and showed reduced intensity peaks at 21.1° and 23.3° in the HVD-NLCs and blank formulations. The WAXS pattern of pure dextran sulfate indicated its amorphous form.

X-ray patterns of a lyophilized HVD-NLCs formulation (VER-9), b lyophilized blank formulation, c trehalose, d dextran sulfate, e verapamil HCl, and f Compritol 888 ATO

Electron Microscopic Examinations

The particle shape and size of the HVD-NLCs formulation (VER-9) were examined using the electron microscope. The liquid preparation of HVD-NLCs formulation (VER-9) observed under transmission electron microscope (TEM) showed that the particles had a spherical shape with the size less than 200 nm (Fig. 10). In contrast, observation under scanning electron microscope (SEM) revealed that the nanoparticles no longer had a spherical shape following lyophilization of the formulation without trehalose. However, the cryoprotective effect of trehalose could be seen when it was incorporated in the HVD-NLCs formulation (VER-9). The SEM image indicated that the trehalose helped to protect the structure of the nanoparticle to such extent when compared to the lyophilized formulation without the cryoprotectant (Fig. 11).

TEM image of VER-9 before lyophilization

SEM images of VER-9 formulation a without trehalose; b with trehalose

Cellular Uptake Study of HVD-NLCs

Caco-2 cells have been extensively used to study drugs intestinal cellular uptake [18]. The Caco-2 cells lines is spontaneously differentiating to form monolayer which has significant morphological and biological resemblance to the intestinal epithelium [19]. Several researchers have reported the in vitro cytotoxicity studies of Compritol ATO 888® [20], oleic acid [21, 22], Tween 80® [23, 24], and poloxamer 188 [25]. These substances were used as excipients in the optimized formulation of HVD-NLCs (VER-9). Based on their finding, these excipients were safe within the concentration used, the cell line type, and cell density that have been employed in the present study. The concentration of verapamil in the samples of VER-9, verapamil solution, and verapamil-dextran complex used in the cellular uptake study was in the range of 10.03 μg/200 μL to 30.1 μg/200 μL. It was found that the verapamil cellular uptake was increased with increasing the verapamil concentration in the samples. The cellular uptake values of verapamil from VER-9, verapamil solution, and verapamil-dextran complex were increased from 6.45 ± 2.62 to 15.92 ± 4.78 μg, 0.89 ± 0.28 to 1.46 ± 0.65 μg, and 0.064 ± 0.019 to 0.118 ± 0.003 μg, respectively (Fig. 12). The verapamil cellular uptake from the VER-9 formulation was 10.90- and 134.91-fold higher than the verapamil solution and verapamil-dextran complex, respectively. The results indicated that verapamil was passively transported from HVD-NLCs, verapamil solution, and verapamil-dextran complex in the caco2-cells. A similar finding of higher cellular uptake of drugs from a lipid-based nanoformulation was reported [26].

In vitro model of Caco-2 cell line showing cellular uptake of HVD-NLCs (VER-9), verapamil solution, and verapamil-dextran complex (mean ± SD, n = 3)

Caco-2 cells act similarly as cell in animals when stimulated by fatty acid. van Greevenbroek et al. suggested that the incorporation of long-chain unsaturated fatty acids (e.g., oleic acid and linoleic acid) into the Caco-2 cells stimulate the secretion of very low-density lipoproteins (VLDL) and chylomicrons. In contrast, administration of saturated fatty acids primarily secretes intermediate- and low-density lipoproteins (IDL and LDL) [27]. Similar findings of increasing chylomicron secretion by the long-chain fatty acids were also reported by Caliph et al. in animal model [28]. In the present investigation, the long-chain fatty acids (Compritol 888 ATO® and oleic acid) used in the preparation of the HVD-NLCs may also stimulate the secretion of chylomicron, and hence increase the cellular uptake of the model drug.

Stability Study

The lyophilized VER-9 formulation was found stable for 6 months at refrigerated condition (5 ± 3 °C) (Table 6). There were no significant differences in the PS, PDI, ZP, and %EE after 6 months of stability study at storage temperature of 5 ± 3 °C. However, the VER-9 formulation was not stable after 1-month storage at the temperatures of 25 ± 2 °C/60 ± 5%RH and 40 ± 2 °C/75 ± 5% RH. The PS and PDI were increased significantly, while the total drug content decreased significantly. After 1 month of stability study, the samples were not measurable due to aggregation and sticky behavior of the nanoparticles.

Conclusion

The lyophilized HVD-NLCs formulation was successfully developed and optimized. The lipid carriers had prolonged the release of verapamil from the HVD-NLCs formulation. The formulation was in the nano size range and stable for 6 months at 5 ± 3 °C. The cellular uptake of verapamil lipid formulation (NLCs) was found higher than the non-lipid formulations. This suggested that the NLCs as a lipid carrier for verapamil may play an important role in improving the absorption of the drug.

Afkortingen

%EE:

Percentage of entrapment efficiency

DMEM:

Dulbecco’s modified Eagles medium

DSC:

Differentiële scanningcalorimetrie

FBS:

Fetal bovine serum

HVD-NLCs:

Hybrid verapamil-dextran nanostructured lipid carriers

ICH:

The international council for harmonization of technical requirements for pharmaceuticals for human

IDL:

Intermediate density lipoproteins

LDL:

Low density lipoproteins

NLCs:

Nanostructured lipid carriers

PBS:

Phosphate-buffered saline

PDI:

Polydispersiteitsindex

PS:

Particle size

RH:

Relative humidity

SEM:

Scanning elektronenmicroscoop

TEM:

Transmissie-elektronenmicroscoop

VLDL:

Very low-density lipoproteins

WAXS:

Wide-angle X-ray scattering

ZP:

Zeta potential


Nanomaterialen

  1. Hybride cloudomgevingen:een gids voor de beste applicaties, workloads en strategieën
  2. De synergie van cellulair IoT en Bluetooth LE
  3. Combinatie van mobiel en wifi voor kosten, connectiviteit en betrouwbaarheid — een webinar
  4. Nanogestructureerde Silica/Gold-Cellulose-Bonded Amino-POSS Hybrid Composite via Sol-Gel Process en zijn eigenschappen
  5. Bioveiligheid en antibacterieel vermogen van grafeen en grafeenoxide in vitro en in vivo
  6. Vervaardiging en karakterisering van ZnO-nanoclips door het door polyol gemedieerde proces
  7. Met antilichaam geconjugeerde silica-gemodificeerde gouden nanostaafjes voor de diagnose en fotothermische therapie van Cryptococcus neoformans:een experiment in vitro
  8. Groeiende gouden nanostructuren voor vormselectieve cellulaire opname
  9. Statistische optimalisatie van de Sol–Gel Electrospinning Procesvoorwaarden voor de bereiding van Polyamide 6/66 Nanovezelbundels
  10. Zeg vaarwel tegen de punten en streepjes om optische opslagmedia te verbeteren
  11. De voordelen en uitdagingen voor hybride productie begrijpen